| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第10-17页 |
| 1.1 玉米赤霉烯酮概述 | 第10-11页 |
| 1.1.1 ZEN的结构与理化性质 | 第10页 |
| 1.1.2 ZEN毒性及危害 | 第10-11页 |
| 1.1.3 ZEN的国家限量标准 | 第11页 |
| 1.2 ZEN分布及污染状况 | 第11-12页 |
| 1.3 ZEN检测方法研究现状 | 第12-13页 |
| 1.3.1 高效液相色谱法 | 第12页 |
| 1.3.2 超高效液相色谱串联质谱法 | 第12-13页 |
| 1.4 ZEN等真菌毒素消减方法研究进展及应用现状 | 第13-14页 |
| 1.4.1 物理法 | 第13页 |
| 1.4.2 化学法 | 第13页 |
| 1.4.3 生物法 | 第13-14页 |
| 1.5 臭氧降解ZEN等真菌毒素的研究进展 | 第14-15页 |
| 1.5.1 臭氧降解ZEN真菌毒素的效果 | 第14页 |
| 1.5.2 真菌毒素降解产物的结构分析 | 第14-15页 |
| 1.6 研究目的与意义 | 第15页 |
| 1.7 主要研究内容 | 第15-17页 |
| 第二章 玉米赤霉烯酮臭氧降解产物研究 | 第17-27页 |
| 2.1 引言 | 第17页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第17页 |
| 2.3 实验方法 | 第17-18页 |
| 2.3.1 ZEN标准溶液的制备 | 第17-18页 |
| 2.3.2 臭氧降解ZEN标准溶液 | 第18页 |
| 2.3.3 ZEN臭氧降解产物的研究 | 第18页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第18-26页 |
| 2.4.1 臭氧降解ZEN的总离子色谱图 | 第18-19页 |
| 2.4.2 ZEN臭氧降解产物相对分子质量及分子式 | 第19-20页 |
| 2.4.3 ZEN臭氧降解产物结构分析 | 第20-25页 |
| 2.4.4 ZEN臭氧降解产物的生成途径 | 第25-26页 |
| 2.5 本章小结 | 第26-27页 |
| 第三章 玉米赤霉烯酮臭氧处理前后的体外毒性评价 | 第27-39页 |
| 3.1 引言 | 第27页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第27-29页 |
| 3.2.1 菌株与培养基 | 第28页 |
| 3.2.2 特殊试剂 | 第28-29页 |
| 3.3 实验方法 | 第29-31页 |
| 3.3.1 HepG2细胞和MCF-7 细胞培养 | 第29页 |
| 3.3.2 CCK-8 法检测HepG2细胞的抑制率 | 第29页 |
| 3.3.3 HepG2细胞凋亡检测 | 第29页 |
| 3.3.4 HepG2细胞活性氧（ROS）检测 | 第29-30页 |
| 3.3.5 HepG2细胞内Ca2+浓度的测定 | 第30页 |
| 3.3.6 E-Screen法检测雌激素效应 | 第30页 |
| 3.3.7 鼠伤寒沙门氏菌回复突变试验检测致突变性 | 第30-31页 |
| 3.3.8 数据统计分析 | 第31页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第31-38页 |
| 3.4.1 CCK-8 法测定ZEN臭氧处理前后对Hep G2细胞的抑制效果 | 第31-32页 |
| 3.4.2 ZEN臭氧处理前后对ROS水平的影响 | 第32-33页 |
| 3.4.3 ZEN臭氧处理前后对HepG2的Ca2+浓度的影响 | 第33-34页 |
| 3.4.4 ZEN臭氧处理前后对细胞凋亡的影响 | 第34-35页 |
| 3.4.5 E-Screen法检测ZEN臭氧处理前后的雌激素效应 | 第35-36页 |
| 3.4.6 鼠伤寒沙门氏菌回复突变试验检测ZEN臭氧处理前后的致突变性 | 第36-38页 |
| 3.5 本章小结 | 第38-39页 |
| 第四章 玉米赤霉烯酮臭氧处理前后的体内毒性评价 | 第39-48页 |
| 4.1 引言 | 第39页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第39页 |
| 4.3 实验方法 | 第39-41页 |
| 4.3.1 动物分组及饲喂 | 第39-40页 |
| 4.3.2 小鼠体重及饲料消耗变化 | 第40页 |
| 4.3.3 血常规指标检测 | 第40页 |
| 4.3.4 血清生化指标检测 | 第40页 |
| 4.3.5 小鼠脏器组织学观察 | 第40页 |
| 4.3.6 数据统计分析 | 第40-41页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第41-47页 |
| 4.4.1 小鼠进食量和体重的变化 | 第41-42页 |
| 4.4.2 小鼠血液常规分析 | 第42页 |
| 4.4.3 小鼠中血清生化分析 | 第42-43页 |
| 4.4.4 小鼠脏器指数及组织切片分析 | 第43-47页 |
| 4.5 本章小结 | 第47-48页 |
| 第五章 玉米赤霉烯酮主要臭氧降解产物的分离制备及定量检测 | 第48-57页 |
| 5.1 引言 | 第48页 |
| 5.2 仪器与试剂 | 第48页 |
| 5.3 实验方法 | 第48-49页 |
| 5.3.1 半制备液相分离制备ZEN主要臭氧降解产物 | 第48-49页 |
| 5.3.2 超高效液相色谱和质谱条件条件 | 第49页 |
| 5.3.3 臭氧处理ZEN标准溶液和ZEN污染的玉米粉 | 第49页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第49-56页 |
| 5.4.1 ZEN主要臭氧降解产物的分离制备 | 第49-50页 |
| 5.4.2 ZEN主要降解产物的核磁共振氢谱 | 第50-51页 |
| 5.4.3 超高效液相色谱色谱柱的优化 | 第51-52页 |
| 5.4.4 定量方法的线性、回收率、精密度及检出限 | 第52-54页 |
| 5.4.5 臭氧处理ZEN标准溶液 | 第54页 |
| 5.4.6 臭氧处理ZEN污染的玉米粉 | 第54-56页 |
| 5.5 本章小结 | 第56-57页 |
| 主要结论与展望 | 第57-59页 |
| 主要结论 | 第57页 |
| 展望 | 第57-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-64页 |
| 附录: 作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第64页 |
