| 致谢 | 第6-8页 |
| 摘要 | 第8-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 缩略词表 | 第14-20页 |
| 1 引言 | 第20-38页 |
| 1.1植物对高温的响应及防御机制 | 第20-29页 |
| 1.1.1 光合作用与植物高温胁迫 | 第21-22页 |
| 1.1.2 热激蛋白及其在高温胁迫响应中的作用 | 第22-24页 |
| 1.1.3 自噬及其在植物高温胁迫响应中的作用 | 第24-27页 |
| 1.1.4 植物激素在植物高温胁迫响应中的作用 | 第27-29页 |
| 1.1.5 植物次级代谢物在植物高温胁迫响应中的作用 | 第29页 |
| 1.2 褪黑素研究现状及其调控植物抗逆性作用机制 | 第29-35页 |
| 1.2.1 逆境胁迫对植物内源MT含量的影响 | 第31-32页 |
| 1.2.2 褪黑素对非生物胁迫的调控作用及机制 | 第32-34页 |
| 1.2.3 褪黑素对生物胁迫的调控作用及机制 | 第34-35页 |
| 1.2.4 褪黑素调控植物生长发育 | 第35页 |
| 1.3 本文的研究目的 | 第35-38页 |
| 2 外源褪黑素对番茄非生物和生物胁迫抗性的影响 | 第38-50页 |
| 2.1 材料与方法 | 第40-43页 |
| 2.1.1 材料培养和实验设计 | 第40-41页 |
| 2.1.2 Pst DC3000菌种的培养及接种 | 第41页 |
| 2.1.3 番茄叶片细菌菌落数的统计 | 第41-42页 |
| 2.1.4 Botrytis cinerea菌种的培养及接种 | 第42页 |
| 2.1.5 番茄叶片灰霉生长量的测定 | 第42页 |
| 2.1.6 叶片净光合速率的测定 | 第42页 |
| 2.1.7 叶片最大光化学效率的测定 | 第42-43页 |
| 2.1.8 方差分析 | 第43页 |
| 2.2 结果 | 第43-47页 |
| 2.2.1 褪黑素对Pst DC3000抗性的影响 | 第43-44页 |
| 2.2.2 褪黑素对Bohytis cinerea抗性的影响 | 第44-45页 |
| 2.2.3 褪黑素对高温抗性的影响 | 第45-46页 |
| 2.2.4 褪黑素对镉胁迫抗性的影响 | 第46-47页 |
| 2.3 讨论 | 第47-50页 |
| 3 外源褪黑素在调控番茄耐热性中的作用及机制 | 第50-77页 |
| 3.1 材料与方法 | 第51-60页 |
| 3.1.1 材料培养和试验设计 | 第51-52页 |
| 3.1.2 光合气体交换的测定 | 第52页 |
| 3.1.3 叶绿素荧光的测定 | 第52页 |
| 3.1.4 细胞膜相对透性和膜脂过氧化检测 | 第52-53页 |
| 3.1.5 叶绿素含量的测定 | 第53页 |
| 3.1.6 叶绿体、线粒体超微结构的观察 | 第53页 |
| 3.1.7 抗氧化酶的提取和活性测定 | 第53-54页 |
| 3.1.8 谷胱甘肽含量的测定 | 第54-55页 |
| 3.1.9 H_2O_2含量的测定 | 第55页 |
| 3.1.10 H_2O_2亚细胞定位检测 | 第55页 |
| 3.1.11 总RNA提取和cDNA合成 | 第55-56页 |
| 3.1.12 基因表达分析 | 第56-57页 |
| 3.1.13 可溶性蛋白的氧化及不可溶性蛋白的积累检测 | 第57-58页 |
| 3.1.14 热激蛋白Hsp70的检测 | 第58-59页 |
| 3.1.15 自噬体的检测 | 第59页 |
| 3.1.16 方差分析 | 第59-60页 |
| 3.2 结果 | 第60-71页 |
| 3.2.1 褪黑素对番茄幼苗光合参数的影响 | 第60页 |
| 3.2.2 褪黑素对番茄最大光化学效率的影响 | 第60-61页 |
| 3.2.3 褪黑素对细胞膜透性和膜质过氧化的影响 | 第61页 |
| 3.2.4 褪黑素对叶片叶绿素和类胡萝卜素含量影响 | 第61-62页 |
| 3.2.5 褪黑素对叶片叶绿体、线粒体超微结构的影响 | 第62-63页 |
| 3.2.6 褪黑素对叶片抗氧化酶活性的影响 | 第63-64页 |
| 3.2.7 褪黑素对番茄AsA-GSH循环的影响 | 第64-65页 |
| 3.2.8 褪黑素对H_2O_2含量的影响及H202亚细胞定位 | 第65-67页 |
| 3.2.9 褪黑素对可溶性蛋白的氧化及不可溶蛋白积累的影响 | 第67-68页 |
| 3.2.10 褪黑素对Hsp70蛋白表达的影响 | 第68-69页 |
| 3.2.11 褪黑素对叶片自噬体形成的影响 | 第69-71页 |
| 3.3 讨论 | 第71-77页 |
| 4 番茄ASMT基因鉴定及系统发育关系分析 | 第77-88页 |
| 4.1 材料与方法 | 第79-80页 |
| 4.1.1 序列数据下载 | 第79页 |
| 4.1.2 番茄ASMT基因家族的鉴定 | 第79-80页 |
| 4.1.3 番茄ASMT基因的结构分析 | 第80页 |
| 4.1.4 番茄ASMT基因染色体分布分析 | 第80页 |
| 4.1.5 番茄与水稻、拟蓝芥的ASMT蛋白序列比对及系统发育树的构建 | 第80页 |
| 4.2 结果 | 第80-86页 |
| 4.2.1 番茄ASMT基因家族的鉴定 | 第80-81页 |
| 4.2.2 番茄ASMT基因的分类 | 第81-82页 |
| 4.2.3 番茄ASMT基因的内含子/外显子结构分析 | 第82-83页 |
| 4.2.4 番茄ASMT基因的保守基序分布及序列分析 | 第83-84页 |
| 4.2.5 番茄ASMT基因染色体分布分析 | 第84-85页 |
| 4.2.6 番茄和水稻、拟南芥ASMT蛋白的进化关系 | 第85-86页 |
| 4.3 讨论 | 第86-88页 |
| 5 ASMT基因沉默对番茄耐热性的影响 | 第88-108页 |
| 5.1 材料与方法 | 第90-97页 |
| 5.1.1 材料培养和实验设计 | 第90-91页 |
| 5.1.2 利用VIGS技术构建基因沉默植株 | 第91-96页 |
| 5.1.3 光合气体交换与叶绿素荧光测定 | 第96页 |
| 5.1.4 叶绿素含量的测定 | 第96-97页 |
| 5.1.5 细胞膜相对透性和膜脂过氧化的测定 | 第97页 |
| 5.1.6 抗氧化酶的提取和活性测定 | 第97页 |
| 5.1.7 谷胱甘肽含量的测定 | 第97页 |
| 5.1.8 总RNA提取和基因表达分析 | 第97页 |
| 5.1.9 可溶性蛋白的氧化及不可溶性蛋白积累的检测 | 第97页 |
| 5.1.10 方差分析 | 第97页 |
| 5.2 结果 | 第97-105页 |
| 5.2.1 褪黑素合成途径中关键酶基因对高温的响应 | 第97-98页 |
| 5.2.2 ASMT基因沉默植株沉默效率验证 | 第98-99页 |
| 5.2.3 ASMT基因沉默对番茄幼苗光合参数的影响 | 第99页 |
| 5.2.4 ASMT基因沉默对叶片表型和最大光化学效率的影响 | 第99-100页 |
| 5.2.5 ASMT基因沉默对番茄膜透性和膜质过氧化的影响 | 第100-101页 |
| 5.2.6 ASMT基因沉默对番茄叶片叶绿素含量影响 | 第101页 |
| 5.2.7 ASMT基因沉默对番茄叶片抗氧化酶活性的影响 | 第101-102页 |
| 5.2.8 ASMT基因沉默对番茄AsA-GSH循环的影响 | 第102-103页 |
| 5.2.9 ASMT基因沉默对叶片蛋白氧化及不可溶性蛋白积累的影响 | 第103-104页 |
| 5.2.10 外源补充褪黑素对ASMT基因沉默番茄光合作用和膜稳定性的影响 | 第104-105页 |
| 5.3 讨论 | 第105-108页 |
| 6 结论 | 第108-112页 |
| 参考文献 | 第112-131页 |
