优势茶皂甙利用菌的筛选、生长特性及茶皂甙诱导其降解多氯联苯研究
| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-12页 |
| 第1章 绪论 | 第12-26页 |
| ·多氯联苯概述 | 第12-14页 |
| ·PCBs的性质及来源 | 第12-13页 |
| ·PCBs在土壤水环境的迁移转化 | 第13-14页 |
| ·水体中PCBs的迁移转化 | 第13页 |
| ·土壤中PCBs的迁移转化 | 第13-14页 |
| ·PCBs的微生物降解途径 | 第14-16页 |
| ·好氧降解 | 第14-15页 |
| ·厌氧降解 | 第15-16页 |
| ·PCBs的诱导生物降解研究 | 第16-22页 |
| ·联苯诱导PCBs生物降解 | 第16-18页 |
| ·植物次生代谢产物诱导PCBs生物降解 | 第18-22页 |
| ·萜类化合物诱导PCBs降解的效应 | 第18-22页 |
| ·内源性酚类化合物诱导PCBs降解的效应 | 第22页 |
| ·茶皂甙在环境修复中的应用 | 第22-24页 |
| ·本论文研究主要目的、意义和内容 | 第24-26页 |
| ·主要目的和意义 | 第24-25页 |
| ·研究内容 | 第25-26页 |
| 第2章 优势茶皂甙利用菌的分离鉴定及其生长特性 | 第26-46页 |
| ·实验材料与方法 | 第26-32页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第26-27页 |
| ·培养基 | 第27-28页 |
| ·优势茶皂甙利用菌的筛选 | 第28页 |
| ·优势茶皂甙利用菌的16S rDNA鉴定 | 第28-29页 |
| ·茶皂甙的生物降解 | 第29页 |
| ·菌悬液制备 | 第29页 |
| ·实验设计 | 第29页 |
| ·茶皂甙含量测定 | 第29页 |
| ·最小抑菌浓度(MIC)的测定 | 第29-30页 |
| ·菌株生长影响因素的研究 | 第30-31页 |
| ·生长曲线与pH变化 | 第30页 |
| ·初始茶皂甙浓度影响 | 第30页 |
| ·温度的影响 | 第30页 |
| ·初始pH值的影响 | 第30-31页 |
| ·重金属离子Pb~(2+)的影响 | 第31页 |
| ·重金属离子Cd~(2+)的影响 | 第31页 |
| ·OD值及pH值测定 | 第31-32页 |
| ·结果与讨论 | 第32-44页 |
| ·优势茶皂甙利用菌筛选结果 | 第32页 |
| ·优势茶皂甙利用菌16S rDNA鉴定结果 | 第32-33页 |
| ·茶皂甙生物降解结果 | 第33-35页 |
| ·最大吸收波长和标准曲线 | 第33-34页 |
| ·茶皂甙生物降解 | 第34-35页 |
| ·最小抑菌浓度 | 第35-37页 |
| ·环境因子对YTS和WTS生长的影响 | 第37-44页 |
| ·YTS和WTS生长曲线与pH变化 | 第37-38页 |
| ·初始茶皂甙浓度的影响 | 第38-39页 |
| ·温度的影响 | 第39-40页 |
| ·初始pH的影响 | 第40-41页 |
| ·铅离子的影响 | 第41-43页 |
| ·镉离子的影响 | 第43-44页 |
| ·小结 | 第44-46页 |
| 第3章 茶皂甙诱导生物降解水溶液中PCBs | 第46-53页 |
| ·实验材料与方法 | 第46-48页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第46页 |
| ·无机盐培养基 | 第46-47页 |
| ·实验设计 | 第47-48页 |
| ·YTS和WTS菌悬液制备 | 第47页 |
| ·处理设置 | 第47页 |
| ·PCBs的提取 | 第47页 |
| ·PCBs的检测 | 第47-48页 |
| ·结果与讨论 | 第48-52页 |
| ·小结 | 第52-53页 |
| 第4章 茶皂甙诱导生物降解土壤中PCBs | 第53-60页 |
| ·实验材料与方法 | 第53-56页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第53页 |
| ·土壤预处理 | 第53-54页 |
| ·YTS和WTS菌悬液制备 | 第54页 |
| ·实验设计 | 第54页 |
| ·PCBs的提取 | 第54-55页 |
| ·PCBs的净化 | 第55页 |
| ·PCBs的检测 | 第55-56页 |
| ·结果与讨论 | 第56-59页 |
| ·小结 | 第59-60页 |
| 第5章 结论与展望 | 第60-63页 |
| ·主要研究结论 | 第60-61页 |
| ·课题的创新与特色 | 第61页 |
| ·展望 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-70页 |
| 硕士期间发表论文情况 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
