摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-14页 |
缩略词一览表 | 第14-16页 |
第一章 文献综述 | 第16-35页 |
1. 病毒的免疫逃逸(Viral Immune Evasion)研究进展 | 第16-23页 |
·机体的免疫系统概述 | 第16-17页 |
·抗原递呈 | 第17-18页 |
·病原逃避MHC Ⅰ抗原递呈的方式 | 第18-21页 |
·病原逃避MHC Ⅱ的抗原递呈 | 第21页 |
·病原逃避免疫的其他机制 | 第21-22页 |
·病原对细胞凋亡的抑制 | 第22-23页 |
2. 新生儿Fc受体(FcRn)的研究进展 | 第23-28页 |
·FcRn的简介 | 第23-25页 |
·FcRn的表达和功能 | 第25-26页 |
·FcRn-IgG的结构分析 | 第26-27页 |
·调节FcRn,IgG之间的相互作用 | 第27页 |
·FcRn与其他病毒互作关系的研究 | 第27-28页 |
3. 人巨细胞病毒的免疫研究进展 | 第28-32页 |
·HCMV结构简介 | 第28-29页 |
·HCMV对先天免疫的调控 | 第29-31页 |
·HCMV对获得性免疫的影响 | 第31-32页 |
4. 本研究的目的和意义 | 第32-35页 |
第二章 HCMV糖蛋白与FcRn的相互作用 | 第35-54页 |
试验一 HCMV糖蛋白UL16与FcRn在质粒转染细胞中的相互作用 | 第35-45页 |
1. 材料与方法 | 第35-40页 |
·质粒 | 第35-36页 |
·细胞 | 第36页 |
·抗体 | 第36页 |
·主要仪器 | 第36页 |
·主要试剂 | 第36页 |
·试验设计 | 第36-37页 |
·试剂配制 | 第37-38页 |
·试验方法 | 第38-40页 |
2. 试验结果 | 第40-45页 |
·FcRn和UL16在质粒转染细胞中共定位 | 第40-42页 |
·FcRn和UL16在质粒转染细胞中有相互作用 | 第42-43页 |
·FcRn和UL16的相互作用并非分子静电效应的验证试验 | 第43-44页 |
·FeRn和UL16的相互作用并非通过钙连蛋白桥链接的验证试验 | 第44-45页 |
3. 小结与讨论 | 第45页 |
试验二 UL16与FeRn在病毒感染的肠道细胞中的相互作用 | 第45-54页 |
1. 材料与方法 | 第46-48页 |
·病毒和细胞 | 第46页 |
·引物 | 第46页 |
·抗体 | 第46页 |
·主要仪器 | 第46页 |
·主要试剂 | 第46页 |
·试验设计 | 第46页 |
·试验方法 | 第46-48页 |
2. 试验结果 | 第48-52页 |
·FcRn和UL16在HCMV感染的肠道细胞中共定位 | 第49-51页 |
·FcRn和UL16在HCMV感染的肠道细胞中有相互作用 | 第51-52页 |
3. 小结与讨论 | 第52-54页 |
第三章 FcRn与HCMV UL16结合的分子机制 | 第54-77页 |
试验一 UL16和FcRn相互作用后会影响后者的正确折叠 | 第54-59页 |
1. 材料与方法 | 第54-55页 |
·细胞 | 第54页 |
·抗体 | 第54-55页 |
·主要仪器 | 第55页 |
·主要试剂 | 第55页 |
·试验设计 | 第55页 |
·试验方法 | 第55页 |
2. 试验结果 | 第55-58页 |
·UL16只与未和轻链β2m结合的FcRn有相互作用 | 第55-57页 |
·在β2m缺失细胞系中,FeRn仍与UL16相互作用的验证试验结果 | 第57-58页 |
3. 小结与讨论 | 第58-59页 |
试验二 FcRn与ULBPs结合UL16部位的对比 | 第59-61页 |
1. 材料与方法 | 第59页 |
·蛋白序列资料来源 | 第59页 |
·氨基酸序列对齐试验软件 | 第59页 |
·试验方法 | 第59页 |
2. 试验结果 | 第59-60页 |
3. 小结与讨论 | 第60-61页 |
试验三 无β2m参与情况下UL16-FcRn重链结合体对IgG的绑定作用 | 第61-64页 |
1. 材料与方法 | 第61-62页 |
·细胞 | 第61页 |
·抗体 | 第61页 |
·主要仪器 | 第61页 |
·主要试剂 | 第61-62页 |
·试验设计 | 第62页 |
·试验方法 | 第62页 |
2. 试验结果 | 第62-63页 |
·FcRn与UL16结合后影响绑定IgG的功能 | 第62-63页 |
3. 小结与讨论 | 第63-64页 |
试验四 FcRn和UL16结合部位探测 | 第64-69页 |
1. 材料与方法 | 第64-67页 |
·质粒 | 第64页 |
·细胞和抗体 | 第64页 |
·主要仪器 | 第64页 |
·主要试剂 | 第64页 |
·试验设计 | 第64-65页 |
·试验方法 | 第65-67页 |
2. 试验结果 | 第67-69页 |
·UL16的N末端与FcRn重链才能有相互作用 | 第67-69页 |
3. 小结与讨论 | 第69页 |
试验五 UL16与FcRn在胞内的结合部位 | 第69-77页 |
1. 材料与方法 | 第70-72页 |
·细胞和抗体 | 第70页 |
·标记用同位素 | 第70页 |
·主要仪器与耗材 | 第70页 |
·主要试剂 | 第70页 |
·试验设计 | 第70-71页 |
·试验方法 | 第71-72页 |
2. 试验结果 | 第72-75页 |
·UL16和FcRn在ER内的相互作用观察结果 | 第72-74页 |
·UL16和FcRn在ER内共定位 | 第74-75页 |
3. 小结与讨论 | 第75-77页 |
第四章 UL16对FcRn转运通路和功能的影响 | 第77-89页 |
试验一 UL16影响FcRn进入早期内体 | 第77-84页 |
1. 材料与方法 | 第77-78页 |
·病毒、细胞与抗体 | 第77页 |
·主要仪器 | 第77页 |
·主要试剂 | 第77页 |
·试验设计 | 第77-78页 |
·试验方法 | 第78页 |
2. 试验结果 | 第78-83页 |
·质粒转染细胞中UL16影响FcRn进入早期内体 | 第78-79页 |
·HCMV感染的肠道细胞中UL16影响FcRn进入早期内体 | 第79-83页 |
3. 小结与讨论 | 第83-84页 |
试验二 HCMV或UL16蛋白都能影响FcRn的功能 | 第84-89页 |
1. 材料与方法 | 第84-86页 |
·病毒、细胞与抗体 | 第84页 |
·血清 | 第84页 |
·主要仪器及耗材 | 第84页 |
·主要试剂 | 第84-85页 |
·试验设计 | 第85页 |
·试验方法 | 第85-86页 |
2. 试验结果 | 第86-88页 |
·HCMV感染的Caco2细胞中IgG转胞吞作用及其定量检测 | 第86-87页 |
·转染UL16的Caco2细胞中IgG转胞吞作用的ELISA定量检测 | 第87-88页 |
3. 小结与讨论 | 第88-89页 |
第五章 活体结扎兔圆小囊和盲肠蚓突接种HCMV与HEV试验研究 | 第89-115页 |
试验一 活体肠袢结扎感染HCMV和HEV后圆小囊及蚓突组织中HCMV和HEV的PCR检测 | 第89-94页 |
1. 材料与方法 | 第90-92页 |
·材料 | 第90页 |
·方法 | 第90-92页 |
2. 结果 | 第92-93页 |
·活体肠袢结扎感染圆小囊及蚓突组织中HCMV和HEV的PCR检测结果 | 第92-93页 |
·Western-blot检测病毒蛋白在感染组织中的表达 | 第93页 |
3. 小结与讨论 | 第93-94页 |
试验二 活体肠袢结扎感染HCMV和HEV后圆小囊及蚓突病理学及HCMV和HEV抗原定位观察 | 第94-110页 |
1. 材料与方法 | 第94-96页 |
·材料 | 第94-95页 |
·方法 | 第95-96页 |
2. 试验结果 | 第96-106页 |
·活体结扎兔圆小囊及蚓突的组织病理学观察结果 | 第96-99页 |
·活体结扎兔圆小囊及蚓突组织中HCMV和HEV ORF2抗原的免疫酶组织化学染色结果 | 第99-104页 |
·激光共聚焦扫描显微镜观察HCMV和HEV ORF2抗原双重免疫荧光共定位观察结果 | 第104-106页 |
3. 小结与讨论 | 第106-110页 |
·肠相关淋巴组织的结构及功能 | 第106-108页 |
·兔圆小囊的结构及功能 | 第108-109页 |
·HCMV可通过兔圆小囊及蚓突感染 | 第109-110页 |
试验三 活体肠袢结扎感染HCMV和HEV后圆小囊及蚓突黏膜IEL及IGC的定量检测 | 第110-115页 |
1. 材料与方法 | 第110页 |
·材料 | 第110页 |
·方法 | 第110页 |
2. 结果 | 第110-113页 |
·活体肠袢结扎感染HCMV和HEV后圆小囊及蚓突黏膜IEL数量变化 | 第110-111页 |
·活体肠袢结扎感染HCMV和HEV后圆小囊及蚓突黏膜IGC数量变化 | 第111-113页 |
3 小结与讨论 | 第113-115页 |
结论 | 第115-116页 |
创新点 | 第116页 |
尚需进一步深入研究的问题 | 第116-117页 |
参考文献 | 第117-133页 |
致谢 | 第133-134页 |
个人简历 | 第134-135页 |