| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 第1章 绪论 | 第10-21页 |
| ·萘酰亚胺化合物的概述 | 第10页 |
| ·抗炎药物最新研究进展 | 第10-11页 |
| ·非甾体类抗炎药 | 第10-11页 |
| ·甾体类抗炎药 | 第11页 |
| ·中药 | 第11页 |
| ·炎症因子的最新研究进展 | 第11-14页 |
| ·COX-2在炎症疾病中的作用 | 第11-12页 |
| ·iNOS在炎症疾病中的作用 | 第12页 |
| ·细胞因子在炎症疾病中作用 | 第12-14页 |
| ·转录因子NF-κB在炎症疾病中的作用 | 第14-17页 |
| ·NF-κB/Rel家族 | 第14页 |
| ·NF-κB活化在免疫和炎症性疾病中的作用 | 第14-15页 |
| ·NF-κB活化机制研究 | 第15-16页 |
| ·抑制NF-κB的意义 | 第16-17页 |
| ·NF-κB在COX-2、iNOS基因表达调控中的作用 | 第17-18页 |
| ·MAPK信号通路在COX-2、iNOS基因表达中的作用 | 第18-19页 |
| ·研究目的与意义 | 第19-20页 |
| ·展望 | 第20-21页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第21-30页 |
| ·实验材料 | 第21-23页 |
| ·细胞株 | 第21页 |
| ·实验药物 | 第21页 |
| ·常用试剂 | 第21-23页 |
| ·仪器与设备 | 第23页 |
| ·常用试剂配制 | 第23-25页 |
| ·常用方法 | 第25-30页 |
| ·细胞传代 | 第25-26页 |
| ·细胞复苏 | 第26页 |
| ·细胞冻存 | 第26页 |
| ·细胞内总蛋白提取步骤 | 第26页 |
| ·细胞内核质蛋白提取步骤 | 第26页 |
| ·Bradford比色法测定蛋白质浓度 | 第26-27页 |
| ·Western Blot | 第27页 |
| ·细胞内RNA提取 | 第27-28页 |
| ·RNA反转成cDNA | 第28页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第28页 |
| ·双荧光素酶报告基因法检测启动子活性 | 第28-30页 |
| 第3章 7b对RAW264.7细胞存活率的研究 | 第30-33页 |
| ·引言 | 第30页 |
| ·材料与方法 | 第30-31页 |
| ·主要材料 | 第30页 |
| ·MTT实验 | 第30-31页 |
| ·统计学方法 | 第31页 |
| ·实验结果 | 第31-32页 |
| ·1 7b对RAW264.7细胞存活率的影响 | 第31-32页 |
| ·讨论 | 第32-33页 |
| 第4章 7b对炎症性介质的影响 | 第33-41页 |
| ·引言 | 第33页 |
| ·实验材料和方法 | 第33-36页 |
| ·实验材料 | 第33页 |
| ·主要实验设备 | 第33页 |
| ·细胞内NO的检测 | 第33-34页 |
| ·ELISA法检测PGE_2 | 第34-35页 |
| ·Western Blot检测COX-2、iNOS、COX-1蛋白表达 | 第35页 |
| ·RT-PCR检测COX-2、COX-1、iNOS的mRNA变化 | 第35-36页 |
| ·统计学方法 | 第36页 |
| ·实验结果 | 第36-39页 |
| ·7b对LPS诱导的PGE_2和NO的影响 | 第36-37页 |
| ·7b对LPS诱导的COX-2和iNOS蛋白的影响 | 第37-38页 |
| ·7b对LPS诱导的COX-2和iNOS mRNA表达的影响 | 第38-39页 |
| ·讨论 | 第39-41页 |
| 第5章 7b对炎症性细胞因子的影响 | 第41-48页 |
| ·引言 | 第41页 |
| ·实验材料与方法 | 第41-43页 |
| ·主要实验材料 | 第41-42页 |
| ·主要实验设备 | 第42页 |
| ·ELISA法检测TNF-α、IL-1β、IL-6和IL-10细胞因子 | 第42页 |
| ·RT-PCR检测TNF-α、IL-1β、IL-6和IL-10的mRNA变化 | 第42页 |
| ·统计学方法 | 第42-43页 |
| ·实验结果 | 第43-46页 |
| ·7b对LPS诱导的TNF-α、IL-1β和IL-6的影响 | 第43-44页 |
| ·7b对LPS诱导的IL-10的影响 | 第44-45页 |
| ·7b对LPS诱导的TNF-α、IL-1β、IL-6和IL-10的mRNA的影响 | 第45-46页 |
| ·讨论 | 第46-48页 |
| 第6章 7b抑制COX-2、iNOS和炎症细胞因子的机制研究 | 第48-62页 |
| ·引言 | 第48页 |
| ·实验材料与方法 | 第48-51页 |
| ·主要实验材料 | 第48-49页 |
| ·主要实验设备 | 第49页 |
| ·细胞转染实验 | 第49页 |
| ·双荧光素酶报告基因法检测启动子活性 | 第49页 |
| ·免疫荧光染色 | 第49-50页 |
| ·Western blot法检测7b对NF-κB/p65、IκBα、p-IκBα以及MAPK通路相关蛋白的影响 | 第50页 |
| ·统计学方法 | 第50-51页 |
| ·实验结果 | 第51-60页 |
| ·7b对LPS诱导的COX-2和iNOS启动子活性的影响 | 第51-52页 |
| ·7b对LPS诱导的NF-κB启动子活化的影响 | 第52-53页 |
| ·7b对LPS诱导的IκB降解和磷酸化的作用 | 第53-55页 |
| ·检测LPS诱导IκB降解和磷酸化的时间 | 第53-54页 |
| ·7b对LPS诱导的IκBα磷酸化和降解的影响 | 第54-55页 |
| ·7b对LPS诱导的NF-κB/p65核转位的影响 | 第55-57页 |
| ·7b对LPS诱导的MAPK磷酸化的影响 | 第57-60页 |
| ·LPS诱导ERK,JNK和p38蛋白磷酸化的时间 | 第57-59页 |
| ·7b对LPS诱导的MAPKs信号通路蛋白磷酸化的影响 | 第59-60页 |
| ·讨论 | 第60-62页 |
| 第7章 结论 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 论文及专利发表情况 | 第75页 |
