| 中文摘要 | 第1-12页 |
| ABSTRACT | 第12-14页 |
| 英文缩略词表 | 第14-15页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 1 研究背景 | 第15-17页 |
| ·川芎嗪及其制剂 | 第15页 |
| ·体外吸收机制研究的常见模型 | 第15-16页 |
| ·川芎嗪抗 AD 脑损伤模型的研究 | 第16-17页 |
| 2 本课题设计思路 | 第17-18页 |
| 第一部分 川芎嗪 O/O 纳米混悬剂的制备与组织分布的研究 | 第18-34页 |
| 第一章 川芎嗪 O/O 纳米混悬剂的制备 | 第18-20页 |
| 1 实验材料 | 第18页 |
| ·仪器 | 第18页 |
| ·药品与试剂 | 第18页 |
| 2 川芎嗪 O/O 纳米混悬剂的制备 | 第18页 |
| 3 川芎嗪 O/O 纳米混悬剂理化性的研究 | 第18-20页 |
| ·透明度的检查 | 第18-19页 |
| ·动力学稳定性 | 第19页 |
| ·热力学稳定性 | 第19页 |
| ·粒径及其分布 | 第19页 |
| ·川芎嗪纳米混悬剂稳定性的初步研究 | 第19-20页 |
| 第二章 川芎嗪 O/O 纳米混悬剂的组织分布研究 | 第20-32页 |
| 1 实验材料 | 第20页 |
| ·仪器 | 第20页 |
| ·药品与试剂 | 第20页 |
| ·实验动物 | 第20页 |
| 2 方法 | 第20-23页 |
| ·标准品溶液配置 | 第20-21页 |
| ·色谱条件 | 第21页 |
| ·空白血浆和组织样品的制备 | 第21页 |
| ·空白血浆样品的制备 | 第21页 |
| ·空白组织样品的制备 | 第21页 |
| ·含标准品血浆和组织样品的制备 | 第21-22页 |
| ·含标准品血浆的制备 | 第21页 |
| ·含标准品组织样品的制备 | 第21-22页 |
| ·给药小鼠血浆和组织样品的制备 | 第22页 |
| ·给药小鼠血浆的制备 | 第22页 |
| ·给药小鼠组织样品的制备 | 第22页 |
| ·给药方法和生物样品的采集 | 第22页 |
| ·数据处理方法 | 第22-23页 |
| 3 结果 | 第23-32页 |
| ·方法专属性的考察 | 第23页 |
| ·标准曲线的制备 | 第23-25页 |
| ·精密度试验 | 第25-26页 |
| ·回收率试验 | 第26-27页 |
| ·绝对回收率试验 | 第26-27页 |
| ·相对回收率试验（准确度实验） | 第27页 |
| ·稳定性考察 | 第27-28页 |
| ·小鼠组织分布 | 第28-30页 |
| ·小鼠血浆的药-时曲线 | 第28-29页 |
| ·TMP 在小鼠各组织中的分布 | 第29-30页 |
| ·不同组织的药动学参数 | 第30页 |
| ·相对生物利用度计算 | 第30-32页 |
| 4 讨论 | 第32页 |
| 本部分小结 | 第32-34页 |
| 第二部分 川芎嗪 O/O 纳米混悬剂在 Caco-2 细胞模型中摄取特性的研究 | 第34-51页 |
| 1 实验器材 | 第34-36页 |
| ·样品的制备 | 第34-35页 |
| ·细胞株 | 第35页 |
| ·试剂与仪器 | 第35-36页 |
| ·主要试剂 | 第35页 |
| ·主要溶液配制 | 第35-36页 |
| ·主要仪器 | 第36页 |
| 2 培养方法 | 第36-39页 |
| ·细胞培养条件 | 第36页 |
| ·新购细胞的培养 | 第36-37页 |
| ·细胞冻存 | 第37页 |
| ·细胞复苏 | 第37页 |
| ·细胞的传代培养 | 第37-38页 |
| ·细胞形态学观察 | 第38页 |
| ·细胞计数[31] | 第38页 |
| ·TMP 纳米混悬剂供试品粒径测量的结果 | 第38-39页 |
| 3 细胞毒性实验 | 第39-41页 |
| ·MTT 分析法原理 | 第39-40页 |
| ·实验步骤 | 第40页 |
| ·实验结果 | 第40-41页 |
| 4 TMP 在 Caco-2 细胞模型上的摄取特性研究 | 第41-42页 |
| ·色谱条件 | 第41页 |
| ·建立 Caco-2 细胞模型 | 第41页 |
| ·考马斯亮蓝法测定细胞蛋白含量 | 第41-42页 |
| ·标准品溶液的配制 | 第42页 |
| ·川芎嗪标准溶液的配制 | 第42页 |
| ·标准蛋白质溶液的配制 | 第42页 |
| ·含标准品细胞样品的制备 | 第42页 |
| ·给药细胞样品的处理 | 第42页 |
| ·数据处理方法 | 第42页 |
| 5 TMP 在 Caco-2 细胞模型上的摄取特性研究结果 | 第42-49页 |
| ·方法专属性的考察 | 第42-43页 |
| ·含药细胞标准曲线的制备 | 第43-44页 |
| ·提取回收率 | 第44页 |
| ·精密度与准确度 | 第44页 |
| ·细胞蛋白标准曲线的制备 | 第44-45页 |
| ·细胞蛋白含量的测定 | 第45页 |
| ·摄取实验 | 第45-49页 |
| ·时间对摄取的影响 | 第45-46页 |
| ·温度对摄取的影响 | 第46页 |
| ·浓度对摄取的影响 | 第46-47页 |
| ·pH 值对摄取的影响 | 第47-48页 |
| ·P-g 抑制剂对摄取的影响 | 第48-49页 |
| 6 讨论 | 第49-50页 |
| 7 本部分小结 | 第50-51页 |
| 第三部分 川芎嗪 O/O 纳米混悬剂抗 AD 模型大鼠脑损伤作用的评价 | 第51-61页 |
| 1 实验材料 | 第51-52页 |
| ·仪器 | 第51页 |
| ·试剂 | 第51-52页 |
| ·动物 | 第52页 |
| 2 实验方法 | 第52-54页 |
| ·造模方法 | 第52页 |
| ·分组及给药 | 第52-53页 |
| ·学习记忆能力的测定 | 第53页 |
| ·海马区脑片的制备 | 第53页 |
| ·尼氏染色 | 第53页 |
| ·原理 | 第53页 |
| ·步骤 | 第53页 |
| ·免疫组化 | 第53-54页 |
| ·原理 | 第53-54页 |
| ·步骤 | 第54页 |
| ·数据处理 | 第54页 |
| 3 实验结果 | 第54-59页 |
| ·水迷宫实验结果 | 第54-55页 |
| ·尼氏染色结果 | 第55-56页 |
| ·免疫组化指标结果 | 第56-59页 |
| 4 讨论 | 第59页 |
| 5 本部分小结 | 第59-61页 |
| 全文总结及展望 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-67页 |
| 综述 | 第67-81页 |
| References | 第75-81页 |
| 附录 | 第81-82页 |
| 致谢 | 第82页 |
