| 英文缩写词表 | 第1-4页 |
| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 目录 | 第7-10页 |
| 第一部分 microRNA-140在乳腺癌细胞中对Nrf2及其下游抗氧化基因的表达调控 | 第10-47页 |
| 第一章 前言 | 第10-23页 |
| 1. NRF2基因的相关研究进展 | 第10-15页 |
| ·Nrf2的分子结构与生物学功能 | 第10-11页 |
| ·Nrf2转录因子的调控机制 | 第11-13页 |
| ·Nrf2调控的靶基因 | 第13页 |
| ·Nrf2与肿瘤 | 第13-15页 |
| ·Nrf2的抗肿瘤作用 | 第13-14页 |
| ·Nrf2的促肿瘤作用 | 第14-15页 |
| 2. MiRNA的相关研究进展 | 第15-23页 |
| ·miRNA的生物合成 | 第16-17页 |
| ·miRNA的生物学特征 | 第17页 |
| ·miRNA的作用机制与功能 | 第17-19页 |
| ·miRNA功能的研究方法 | 第19页 |
| ·miRNA与肿瘤 | 第19-22页 |
| ·miR-140的研究进展 | 第22-23页 |
| 第二章 材料与方法 | 第23-33页 |
| ·实验材料 | 第23页 |
| ·实验方法 | 第23-33页 |
| ·细胞培养与转染 | 第23-24页 |
| ·生物信息学分析 | 第24页 |
| ·质粒构建 | 第24-27页 |
| ·双荧光素酶报告基因检测 | 第27页 |
| ·荧光定量PCR检测相关基因的表达 | 第27-30页 |
| ·免疫印迹法检测相关基因的蛋白水平 | 第30-31页 |
| ·MTT法检测细胞增殖 | 第31-32页 |
| ·统计学分析 | 第32-33页 |
| 第三章 实验结果 | 第33-39页 |
| ·NRF2与MIR-140结合靶点的预测 | 第33页 |
| ·NRF2是MIR-140的靶基因 | 第33-36页 |
| ·MIR-140抑制NRF2下游基因的表达 | 第36-37页 |
| ·过表达MIR-140抑制乳腺癌细胞的增殖,并增加细胞对H202氧化应激的敏感性 | 第37-39页 |
| 讨论 | 第39-41页 |
| 参考文献 | 第41-47页 |
| 第二部分 NRAGE基因敲除小鼠不孕不育的研究 | 第47-59页 |
| 1. 前言 | 第47-48页 |
| 2. 材料与方法 | 第48-52页 |
| ·实验材料 | 第48页 |
| ·实验方法 | 第48-52页 |
| ·细胞培养与转染 | 第48页 |
| ·小鼠血浆采集处理 | 第48页 |
| ·小鼠标本采集 | 第48页 |
| ·小鼠组织提取RNA | 第48-49页 |
| ·小鼠组织提取蛋白 | 第49页 |
| ·石蜡切片 | 第49-50页 |
| ·质粒构建 | 第50页 |
| ·实时荧光定量PCR | 第50-51页 |
| ·统计学分析 | 第51-52页 |
| 3. 实验结果 | 第52-57页 |
| ·小鼠血液中雌激素含量的测定 | 第52页 |
| ·小鼠卵巢、子宫组织学观察 | 第52-53页 |
| ·NRAGE基因与雌激素受体EsRA的调控关系 | 第53-54页 |
| ·小鼠子宫组织中EsRA的表达情况 | 第54-55页 |
| ·乳腺癌细胞中EsRA MRNA的表达情况 | 第55-57页 |
| 讨论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-59页 |
| 附录 | 第59-63页 |
| 致谢 | 第63页 |