中文摘要 | 第1-12页 |
英文摘要 | 第12-14页 |
第一章 前言 | 第14-18页 |
一 HIV简介 | 第14页 |
二 HIV的感染机制、现有抗HIV药物及存在问题 | 第14-16页 |
三 本论文的设计思路 | 第16-17页 |
四 本论文的研究内容 | 第17-18页 |
第二章 AZTP在不同温度不同pH缓冲液中的降解动力学 | 第18-28页 |
1.仪器及试药 | 第18-19页 |
·仪器 | 第18页 |
·试药 | 第18-19页 |
2.试验与结果 | 第19-26页 |
·色谱条件 | 第19页 |
·齐多夫定棕榈酸酯脂质体的制备 | 第19页 |
·处方 | 第19页 |
·工艺 | 第19页 |
·AZTP在不同温度、不同pH磷酸盐缓冲液中的降解动力学 | 第19-26页 |
·缓冲液的配制 | 第19页 |
·标准曲线的制备 | 第19-20页 |
·储备液的配制 | 第20页 |
·AZTP在不同温度、不同pH磷酸盐缓冲液中的降解动力学 | 第20-26页 |
3.讨论 | 第26-27页 |
4.小结 | 第27-28页 |
第三章 AZTP在小鼠各组织匀浆中的降解动力学 | 第28-39页 |
1.仪器、试药及试验动物 | 第28-29页 |
·仪器 | 第28页 |
·试药 | 第28页 |
·试验动物 | 第28-29页 |
2.试验与结果 | 第29-37页 |
·组织匀浆样品的制备 | 第29页 |
·生物样品中AZTP含量测定方法的建立 | 第29-35页 |
·色谱条件 | 第29页 |
·专属性实验 | 第29-32页 |
·标准曲线的制备 | 第32页 |
·精密度 | 第32-33页 |
·回收率 | 第33-35页 |
·AZTP在小鼠各组织匀浆中的降解动力学 | 第35-37页 |
3.讨论 | 第37-38页 |
4.小结 | 第38-39页 |
第四章 AZTP冻干脂质体的制备及其稳定性考察 | 第39-50页 |
1.仪器及试药 | 第39页 |
·仪器 | 第39页 |
·试药 | 第39页 |
2.试验及结果 | 第39-48页 |
·冷冻干燥工艺的单因素考察 | 第39-41页 |
·冻干制剂标准的设定 | 第39-40页 |
·预冻的考察 | 第40页 |
·干燥时间的考察 | 第40-41页 |
·样品摆放位置的考察 | 第41页 |
·冷冻干燥处方的筛选 | 第41-43页 |
·冻干保护剂的加入方式 | 第41页 |
·冻干保护剂的种类筛选 | 第41-43页 |
·冻干脂质体稳定性考察 | 第43-48页 |
·色泽观察 | 第43页 |
·脂质体的粒子形态观察 | 第43-44页 |
·脂质体粒径的测定 | 第44-45页 |
·包封率的测定 | 第45-46页 |
·过氧化值(POV)的测定 | 第46-47页 |
·长期稳定性实验 | 第47-48页 |
3.讨论 | 第48-49页 |
4.小结 | 第49-50页 |
第五章 AZTP脂质体小鼠体内药动学和组织分布的研究 | 第50-70页 |
1.仪器、试药及试验动物 | 第50页 |
·仪器 | 第50页 |
·试药 | 第50页 |
·试验动物 | 第50页 |
2.试验及结果 | 第50-68页 |
·脂质体制剂的制备 | 第50-51页 |
·给药方案 | 第51页 |
·样品的处理 | 第51页 |
·血浆样品的预处理 | 第51页 |
·组织样品的预处理 | 第51页 |
·HPLC分析方法的建立 | 第51-58页 |
·色谱条件 | 第51-52页 |
·专属性实验 | 第52-54页 |
·标准曲线 | 第54页 |
·最低检测限 | 第54页 |
·精密度 | 第54-55页 |
·回收率 | 第55-58页 |
·数据处理 | 第58-67页 |
·药动学数据处理 | 第58-60页 |
·组织分布数据处理 | 第60-67页 |
·靶向性评价 | 第67-68页 |
3.讨论 | 第68-69页 |
4.小结 | 第69-70页 |
全文结论 | 第70-71页 |
参考文献 | 第71-75页 |
致谢 | 第75-76页 |
发表文章 | 第76页 |
申请专利 | 第76页 |