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3株鸭源呼肠孤病毒对鸭胚成纤维细胞致病性研究

摘要第1-9页
Abstract第9-11页
缩略词表第11-12页
前言第12-19页
 1 禽呼肠孤病毒研究概述第12-15页
   ·病原学第12-13页
   ·培养特性第13页
   ·流行病学与临床症状第13-15页
     ·鸡呼肠孤病毒感染第13-14页
     ·鸭呼肠孤病毒感染第14-15页
 2 致病机理第15-19页
   ·肿瘤坏死因子TNF-α第15-19页
     ·TNF-α生物学活性及其在组织损伤中的作用第15-17页
     ·禽呼肠孤病毒感染与TNF-α第17页
     ·呼肠孤病毒与细胞凋亡第17-19页
本研究的目的与意义第19-20页
材料与方法第20-31页
 1 材料第20-22页
   ·供试毒株第20页
   ·试验动物第20页
   ·主要试剂耗材第20页
   ·主要溶液及其配制第20-21页
     ·PBS(0.2M,PH=7.2,无钙镁)配制第20-21页
     ·4%多聚甲醛第21页
     ·细胞生长(营养)液第21页
     ·细胞维持液第21页
     ·50×TAE电泳缓冲液第21页
     ·琼脂糖凝胶第21页
   ·主要仪器、型号及生产厂家第21-22页
 2 方法第22-31页
   ·毒株准备第22-23页
     ·病毒增殖第22页
     ·病毒的ELD50测定第22-23页
   ·原代鸭胚成纤维细胞培养及传代第23页
   ·病毒的接种和增殖第23-24页
   ·病毒纯化及负染色观察第24页
   ·病毒致鸭胚成纤维细胞的病变第24-25页
   ·病毒致鸭胚成纤维细胞的超微病变第25页
   ·实时荧光定量RT-PCR检测细胞、细胞培养液以及两者混合物中病毒含量第25-27页
   ·ELISA方法检测细胞培养液中TNF-α含量第27页
   ·实时荧光定量RT-PCR检测TNF-αmRNA表达水平第27-30页
     ·实时荧光定量RT-PCR检测TNF-αmRNA方法的建立第27-30页
       ·引物设计第27页
       ·细胞基因组总RNA提取第27-29页
       ·PCR扩增检测β-actin、TNF-α基因cDNA第29页
       ·实时荧光定量PT-PCR扩增β-actin、TNF-α基因第29-30页
     ·样品检测第30页
   ·数据统计与处理第30-31页
试验结果第31-50页
 1 鸭源禽呼肠孤病毒HP0931 8株的LD50测定第31-32页
 2 病毒纯化负染色观察第32页
 3 病毒致鸭胚成纤维细胞的病理变化观察第32-39页
   ·倒置显微镜下观察细胞形态第32-34页
   ·光镜下观察细胞病变第34-35页
   ·鸭源禽呼肠孤病毒感染后超微组织病理学变化第35-39页
 4 实时荧光定量RT-PCR检测病毒细胞、细胞上清以及两者的混合物中病毒含量变化第39-43页
   ·RT-PCR检测细胞、细胞上清以及两者的混合物中的病毒核酸RNA结果第39-41页
   ·实时荧光定量RT-PCR检测病毒含量结果第41-43页
 5 TNF-α的含量变化第43-50页
   ·ELISA方法检测接毒组与对照组细胞上清中TNF-α含量变化第43-45页
   ·实时荧光定量RT-PCR扩增TNF-α基因第45-50页
     ·实时荧光定量RT-PCR扩增TNF-α基因方法的建立第45-48页
       ·细胞总RNA的提取结果第45-46页
       ·RT-PCR检测β-actin基因与TNF-α基因结果第46页
       ·实时荧光定量PCR扩增曲线第46-47页
       ·熔解曲线分析第47-48页
     ·实时荧光定量RT-PCR方法扩增目的基因结果第48-50页
讨论第50-53页
 1 3株鸭源呼肠孤病毒的形态特点第50页
 2 3株鸭源呼肠孤病毒培养特性第50-51页
   ·3株鸭源呼肠孤病毒致鸭胚病变特点第50页
   ·3株鸭源呼肠孤病毒致细胞病变特点第50-51页
   ·3株病毒在鸭胚成纤维细胞中增殖特点第51页
 3 3 株DRV病毒感染DEF后TNF-α含量变化第51-53页
结论第53-54页
参考文献第54-60页
致谢第60-61页
附录第61页

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