| 缩略词表 | 第1-12页 |
| 中文摘要 | 第12-17页 |
| 英文摘要 | 第17-23页 |
| 1 前言 | 第23-26页 |
| 2 实验材料 | 第26-34页 |
| ·虫草标本来源及供试菌株 | 第26-28页 |
| ·动物 | 第28页 |
| ·药品与试剂 | 第28-31页 |
| ·常用培养基 | 第31页 |
| ·仪器与设备 | 第31-34页 |
| 3 实验方法 | 第34-48页 |
| ·供试虫草有性型的鉴定 | 第34页 |
| ·供试虫草无性型的分离和鉴定 | 第34-35页 |
| ·供试虫草有性型与无性型的关系确证 | 第35-36页 |
| ·经典方法 | 第35页 |
| ·分子生物学方法 | 第35-36页 |
| ·供试虫草无性型及相关菌株活性筛选 | 第36-39页 |
| ·菌种初筛 | 第36-39页 |
| ·SOD活性和含量比较研究 | 第36-37页 |
| ·体外清除DPPH自由基活性 | 第37-38页 |
| ·体外抑制单胺氧化酶活性 | 第38-39页 |
| ·细脚拟青霉菌株复筛 | 第39页 |
| ·体外清除DPPH自由基活性筛选 | 第39页 |
| ·体外抑制MAO活性筛选 | 第39页 |
| ·细脚拟青霉RCEF0788菌株的形态学再鉴定 | 第39页 |
| ·初步确定细脚拟青霉RCEF0788菌株的培养时间 | 第39-40页 |
| ·发酵工艺对抑制单胺氧化酶活性的影响 | 第40-42页 |
| ·单因素 | 第40页 |
| ·氮源 | 第40页 |
| ·碳源 | 第40页 |
| ·pH | 第40页 |
| ·正交设计 | 第40-41页 |
| ·正交设计结果验证和细脚拟青霉优化培养工艺的确立 | 第41页 |
| ·阿拉伯糖种类和灭菌方式对产物抑制MAO活性的影响 | 第41-42页 |
| ·提取过程中浓缩温度对产物抑制MAO活性的影响 | 第42页 |
| ·活性部位的初步研究 | 第42页 |
| ·不同有机溶剂提取物活性比较 | 第42页 |
| ·硫酸铵盐析后活性部位分析 | 第42页 |
| ·细脚拟青霉优化工艺后发酵液提取物的基本化学成分研究 | 第42-43页 |
| ·BCPT的抗抑郁作用及机理研究 | 第43页 |
| ·慢性应激(CUS)抑郁大鼠模型 | 第43页 |
| ·CUS大鼠开野行为的测定 | 第43页 |
| ·CUS大鼠糖水消耗量测定 | 第43页 |
| ·大鼠脑组织脂质过氧化有关指标测定 | 第43-45页 |
| ·蛋白质含量的测定 | 第43-44页 |
| ·丙二醛(MDA)含量测定 | 第44页 |
| ·一氧化氮(NO)含量测定 | 第44页 |
| ·过氧化氢酶(CAT)活性测定 | 第44页 |
| ·超氧化物歧化酶(SOD)活性测定 | 第44-45页 |
| ·谷光甘肽过氧化物酶(GSH-PX)活力测定 | 第45页 |
| ·免疫功能有关指标检测 | 第45-46页 |
| ·CUS大鼠血清对正常小鼠脾淋巴细胞转化实验 | 第45-46页 |
| ·对CUS大鼠脾淋巴细胞转化实验 | 第46页 |
| ·CUS大鼠血清中IL-1_β、IL-6和TNF-α含量测定 | 第46页 |
| ·CUS大鼠大脑皮质神经元BDNF和Bax的测定 | 第46-47页 |
| ·标本制作 | 第46-47页 |
| ·计算机图像分析方法 | 第47页 |
| ·大鼠血清CORT、血浆ACTH含量及下丘脑CRH mRNA表达的测定 | 第47-48页 |
| ·血清CORT和血浆ACTH含量测定 | 第47页 |
| ·RT-PCR法检测大鼠下丘脑CRH mRNA表达 | 第47-48页 |
| ·大鼠海马超微结构观察 | 第48页 |
| ·数据的统计学处理 | 第48页 |
| 4 实验结果 | 第48-83页 |
| ·虫草及其无性型鉴定以及两者关系确证 | 第48-59页 |
| ·拟细虫草及其无性型拟细羽束梗孢新组合 | 第49页 |
| ·台湾虫草及其无性型黄山被毛孢新种 | 第49-51页 |
| ·柱孢虫草及其无性型紫色野村菌 | 第51-52页 |
| ·牯牛降虫草新种及其绿僵菌无性型 | 第52-55页 |
| ·根足虫草变种琅琊山新变种及其无性型根足被毛孢新种 | 第55-57页 |
| ·蛹虫草及其蚧霉属无性型新组合 | 第57-58页 |
| ·其它虫草及其无性型 | 第58-59页 |
| ·虫草无性型及相关菌株的活性筛选 | 第59-65页 |
| ·菌种初筛 | 第59-62页 |
| ·SOD比较研究 | 第59-60页 |
| ·清除DPPH自由基活性 | 第60-61页 |
| ·体外抑制MAO活性 | 第61-62页 |
| ·细脚拟青霉菌株复筛 | 第62-65页 |
| ·体外清除DPPH自由基活性筛选 | 第63-64页 |
| ·体外抑制MAO活性筛选 | 第64-65页 |
| ·细脚拟青霉RCEF0788菌株的形态学再鉴定 | 第65-66页 |
| ·细脚拟青霉RCEF0788菌株的培养时间初步确定 | 第66-67页 |
| ·RCEF0788菌株抑制MAO活性产物的培养和提取工艺 | 第67-76页 |
| ·单因素 | 第67-69页 |
| ·正交设计 | 第69-72页 |
| ·正交设计结果验证和最优培养工艺的确立 | 第72-73页 |
| ·阿拉伯糖种类和除菌方式对产物抑制MAO活性的影响 | 第73-74页 |
| ·浓缩温度对抑制MAO活性的影响 | 第74页 |
| ·不同有机溶剂提取物活性比较 | 第74-75页 |
| ·BCPT基本成分分析 | 第75-76页 |
| ·BCPT的抗抑郁作用及机理 | 第76-83页 |
| ·BCPT对CUS大鼠开野行为的影响 | 第76-77页 |
| ·BCPT对CUS大鼠糖水消耗量的影响 | 第77页 |
| ·BCPT对CUS大鼠脑组织脂质过氧化的影响 | 第77-78页 |
| ·BCPT对大鼠脑组织中MDA和NO含量的影响 | 第77页 |
| ·BCPT对大鼠脑组织中CAT、SOD及GSH-PX活力的影响 | 第77-78页 |
| ·BCPT对CUS大鼠免疫功能的影响 | 第78-80页 |
| ·CUS大鼠血清对正常小鼠脾淋巴细胞转化的影响 | 第78-79页 |
| ·BCPT对CUS大鼠脾淋巴细胞转化的影响 | 第79-80页 |
| ·BCPT对CUS大鼠血清IL-1_β、IL-6和TNF-α含量的影响 | 第80页 |
| ·BCPT对CUS大鼠大脑皮质神经元BDNF的影响 | 第80页 |
| ·BCPT对CUS大鼠大脑皮质神经元Bax的影响 | 第80-81页 |
| ·BCPT对CUS大鼠血清CORT、血浆ACTH含量及下丘脑CRH mRNA表达的影响 | 第81-82页 |
| ·BCPT对CUS大鼠血清CORT和血浆ACTH含量的影响 | 第81-82页 |
| ·BCPT对CUS大鼠下丘脑CRH mRNA表达的影响 | 第82页 |
| ·BCPT对CUS大鼠海马超微结构的影响 | 第82-83页 |
| 5 讨论 | 第83-106页 |
| 6 小结 | 第106-108页 |
| 参考文献 | 第108-117页 |
| 附录 | 第117-123页 |
| 1 作者简介 | 第117-118页 |
| 2 在学期间研究成果 | 第118-122页 |
| 3 致谢 | 第122-123页 |
| 综述1、2及参考文献 | 第123-160页 |
| 图版或图 | 第160-181页 |
| 实验流程图 | 第181页 |
