| 目录 | 第1-14页 |
| 正文图表目录 | 第14-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-53页 |
| ·次生维管系统与木材形成 | 第15-31页 |
| ·次生维管系统的概念 | 第15页 |
| ·次生维管系统的生物学及经济价值 | 第15-16页 |
| ·次生维管系统的结构 | 第16-17页 |
| ·次生维管系统发育过程及调控 | 第17-31页 |
| ·原形成层的形成和维持 | 第18-19页 |
| ·维管束径向发育模式调控 | 第19-21页 |
| ·初生分生组织与次生维管形成层区调控比较 | 第21-23页 |
| ·细胞扩张／伸长及次生壁的形成 | 第23-26页 |
| ·木质素的生物合成与沉积 | 第26-28页 |
| ·细胞程序性死亡与木材形成 | 第28-29页 |
| ·激素在次生维管系统发育调控过程中的作用 | 第29-31页 |
| ·次生维管系统发育研究的实验系统 | 第31-36页 |
| ·细胞培养系统 | 第32-33页 |
| ·组织切片系统 | 第33-34页 |
| ·激光显微切割系统 | 第34页 |
| ·植株整体系统 | 第34-35页 |
| ·创伤系统 | 第35-36页 |
| ·次生维管系统的研究方法 | 第36-49页 |
| ·基因组学研究方法及应用 | 第36-39页 |
| ·遗传作图(Genetic Mapping) | 第36-37页 |
| ·单核苷酸多态性分析(Single Nueleotide Polymorphism,SNP) | 第37页 |
| ·荧光原位杂交(FISH)及DNA纤维-荧光原位杂交(Fiber-FISH)技术 | 第37-38页 |
| ·限制性标志基因组扫描技术(Restriction Landmark Genomic Scanning,RLGS) | 第38-39页 |
| ·转录组学研究方法 | 第39-42页 |
| ·EST比较分析 | 第39-40页 |
| ·抑制性扣除杂交(Suppressive Subtractive Hybridization,SSH) | 第40页 |
| ·基因表达系列分析(Serial Analysis of Gene Expression,SAGE) | 第40-41页 |
| ·基于cDNA-AFLP技术的转录组分析 | 第41页 |
| ·基于基因芯片的转录组分析 | 第41-42页 |
| ·代谢组学研究方法 | 第42-43页 |
| ·蛋白质组学研究方法 | 第43-49页 |
| ·二维凝胶电泳(2-DE)在蛋白质组学分离工作中的位置 | 第43-45页 |
| ·多维色谱在蛋白质组学分离工作中的应用与进展 | 第45-47页 |
| ·其它蛋白质组学分离技术 | 第47页 |
| ·质谱仪在蛋白质组学鉴定工作中的应用与进展 | 第47-49页 |
| ·本研究的立论依据和研究意义 | 第49-50页 |
| ·本研究论文的技术路线 | 第50-53页 |
| 第二章 材料和方法 | 第53-67页 |
| ·毛白杨剥皮再生及取样 | 第53-54页 |
| ·毛白杨植株选择 | 第53页 |
| ·大面积剥皮创伤 | 第53页 |
| ·再生样品的获取 | 第53页 |
| ·再生过程的显微观察 | 第53-54页 |
| ·再生样品蛋白质提取 | 第54-58页 |
| ·样品总蛋白提取 | 第54-56页 |
| ·低pH值法提取总蛋白 | 第54页 |
| ·高pH值法提取总蛋白 | 第54-55页 |
| ·正辛基葡萄苷溶解法提取总蛋白 | 第55页 |
| ·膜蛋白提取法 | 第55-56页 |
| ·总蛋白浓度测定 | 第56-57页 |
| ·BCA法蛋白质浓度测定 | 第56页 |
| ·Bradford法蛋白质浓度测定 | 第56-57页 |
| ·总蛋白的二维电泳分析评价 | 第57-58页 |
| ·二维聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第57页 |
| ·考马斯亮兰染色 | 第57页 |
| ·银染 | 第57-58页 |
| ·总蛋白的二维色谱分离 | 第58-62页 |
| ·总蛋白溶解 | 第58页 |
| ·蛋白质溶液脱盐 | 第58-59页 |
| ·蛋白质浓度测定 | 第59页 |
| ·一维聚焦色谱分离 | 第59-61页 |
| ·试剂准备 | 第59页 |
| ·色谱条件 | 第59页 |
| ·分析程序 | 第59-61页 |
| ·二维反相色谱分离 | 第61-62页 |
| ·流动相的准备 | 第61页 |
| ·色谱条件 | 第61页 |
| ·分析程序 | 第61-62页 |
| ·再生过程的蛋白质表达分析 | 第62页 |
| ·色谱图的转换 | 第62页 |
| ·蛋白质表达的差异比较 | 第62页 |
| ·差异蛋白的选取 | 第62页 |
| ·蛋白质PMF鉴定 | 第62-64页 |
| ·试剂配制 | 第62-63页 |
| ·蛋白质样品的酶解 | 第63页 |
| ·酶解产物脱盐 | 第63-64页 |
| ·MALDI-TOF MS分析 | 第64页 |
| ·MS结果的数据库检索 | 第64页 |
| ·部分蛋白质编码基因转录本表达模式测定 | 第64-67页 |
| ·总RNA提取 | 第64-65页 |
| ·单链cDNA制备 | 第65页 |
| ·定量PCR引物设计 | 第65-66页 |
| ·定量PCR分析 | 第66-67页 |
| 第三章 结果与分析 | 第67-87页 |
| ·毛白杨次生维管系统再生过程 | 第67-70页 |
| ·植物材料总蛋白的提取 | 第70-72页 |
| ·三种提取可溶性蛋白方法的比较 | 第70-71页 |
| ·膜蛋白的提取 | 第71页 |
| ·总蛋白的提取 | 第71-72页 |
| ·总蛋白的分离 | 第72-79页 |
| ·一维聚焦色谱(HPCF)的可靠性分析及样品分离 | 第72-75页 |
| ·简单混合物的分离效果 | 第72-73页 |
| ·毛白杨形成层区样品的分离效果 | 第73-74页 |
| ·次生维管再生样品的分离 | 第74-75页 |
| ·二维反相色谱(HPRP)的可靠性分析及样品分离 | 第75-79页 |
| ·简单混合物的分离效果 | 第75-76页 |
| ·毛白杨形成层区样品的分离效果 | 第76-78页 |
| ·次生维管再生样品的分离 | 第78-79页 |
| ·再生过程的蛋白质表达分析 | 第79-80页 |
| ·差异蛋白的PMF鉴定 | 第80-81页 |
| ·毛白杨形成层区蛋白质表达谱 | 第81-83页 |
| ·部分蛋白质编码基因的MRNA表达模式分析 | 第83-87页 |
| 第四章 讨论 | 第87-105页 |
| ·植物次生维管系统研究的实验体系 | 第87-88页 |
| ·蛋白质样品制备方案 | 第88-90页 |
| ·二维色谱系统的分离能力 | 第90-91页 |
| ·与2-DE／MALDI TOF结果比较 | 第91-92页 |
| ·PF2D／MALDITOF系统可靠性 | 第92-93页 |
| ·次生维管系统再生过程中的差异蛋白 | 第93-97页 |
| ·细胞周期和细胞分裂 | 第93-94页 |
| ·细胞骨架与维管发育 | 第94页 |
| ·信号转导在维管发育中的地位 | 第94-95页 |
| ·转录因子与转录调控 | 第95-96页 |
| ·细胞次生壁的形成 | 第96-97页 |
| ·11个蛋白质编码基因转录水平的定量分析 | 第97-105页 |
| ·WAK4蛋白编码基因 | 第97-98页 |
| ·CIPK18蛋白编码基因 | 第98-99页 |
| ·MYB114转录因子 | 第99-100页 |
| ·14-3-3 like蛋白编码基因 | 第100-101页 |
| ·几个未知功能基因 | 第101-105页 |
| 第五章 结论 | 第105-107页 |
| 参考文献 | 第107-139页 |
| 致谢 | 第139-141页 |
| 附表 | 第141-190页 |
| 附表一 | 第141-173页 |
| 附表二 | 第173-187页 |
| 附表三 | 第187-190页 |
