| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-15页 |
| 第一章 前言 | 第15-34页 |
| 1 小分子化合物与DNA作用机理研究 | 第15-19页 |
| ·与DNA作用的小分子化合物的分类 | 第15-16页 |
| ·小分子化合物与DNA的作用方式 | 第16-17页 |
| ·非共价结合 | 第16-17页 |
| ·共价结合 | 第17页 |
| ·剪切作用 | 第17页 |
| ·小分子化合物与DNA作用的研究方法 | 第17-19页 |
| ·光谱法 | 第17-18页 |
| ·电化学方法 | 第18页 |
| ·序列凝胶电泳及足印迹分析技术 | 第18页 |
| ·X-射线晶体衍射分析法 | 第18-19页 |
| 2 DNA生物传感器的研究 | 第19-32页 |
| ·DNA生物传感器的设计原理 | 第19页 |
| ·DNA生物传感器的分类 | 第19-21页 |
| ·DNA电化学传感器 | 第20页 |
| ·DNA光学传感器 | 第20页 |
| ·DNA压电传感器 | 第20-21页 |
| ·杂交指示剂的研究 | 第21-22页 |
| ·内部指示剂 | 第21-22页 |
| ·外部指示剂 | 第22页 |
| ·DNA生物传感器的研究现状及发展趋势 | 第22-29页 |
| ·基于标记的DNA杂交的电化学检测 | 第23-27页 |
| ·无标记的DNA杂交电化学检测 | 第27-29页 |
| ·DNA生物传感器的应用与展望 | 第29-32页 |
| ·DNA电化学生物传感器的应用 | 第29-31页 |
| ·前景展望 | 第31-32页 |
| 3 立题依据及研究内容 | 第32-34页 |
| 第二章 苯并咪唑衍生物的合成及其金属配合物与DNA作用机理的研究 | 第34-51页 |
| 1 实验部分 | 第34-38页 |
| ·仪器与试剂 | 第34-35页 |
| ·实验方法 | 第35-38页 |
| ·2-取代苯基苯并咪唑类化合物的合成 | 第35-36页 |
| ·苯并咪唑Cd(Ⅱ)配合物的合成 | 第36页 |
| ·晶体数据收集及结构检测 | 第36-37页 |
| ·[Cd(C_7H_6N_2)_2]~(2+)与DNA相互作用的电化学研究 | 第37-38页 |
| 2 结果与讨论 | 第38-49页 |
| ·化合物的元素分析 | 第38页 |
| ·化合物的红外光谱分析 | 第38-40页 |
| ·化合物的晶体结构 | 第40-48页 |
| ·化合物4a的晶体结构解析 | 第40-44页 |
| ·化合物4b的晶体结构解析 | 第44-48页 |
| ·[Cd(C_7H_6N_2)_2]~(2+)的电化学性质 | 第48-49页 |
| ·[Cd(C_7H_6N_2)_2]~(2+)与DNA相互作用的电化学研究 | 第49页 |
| 3 小结 | 第49-51页 |
| 第三章 Schiff碱铜(Ⅱ)配合物的合成及其与DNA作用机理的研究 | 第51-60页 |
| 1 实验部分 | 第51-52页 |
| ·仪器与试剂 | 第51-52页 |
| ·实验方法 | 第52页 |
| ·[Cu(C_(16)H_(14)N_2O_2)]配合物的合成 | 第52页 |
| ·[Cu(C_(16)H_(14)N_2O_2)]与DNA相互作用的电化学研究 | 第52页 |
| 2 结果与讨论 | 第52-59页 |
| ·化合物的元素分析 | 第52-53页 |
| ·化合物的红外光谱分析 | 第53页 |
| ·[Cu(C_(16)H_(14)N_2O_2)]与DNA相互作用的电化学研究 | 第53-59页 |
| ·[Cu(C_(16)H_(14)N_2O_2)]配合物在玻碳电极上的电化学性质 | 第53-54页 |
| ·pH值对[Cu(C_(16)H_(14)N_2O_2)]与DNA相互作用的影响 | 第54-55页 |
| ·反应时间对[Cu(C_(16)H_(14)N_2O_2)]与DNA相互作用的影响 | 第55页 |
| ·DNA浓度对[Cu(C_(16)H_(14)N_2O_2)]氧化峰电流的影响 | 第55-56页 |
| ·扫速对[Cu(C_(16)H_(14)N_2O_2)]氧化峰电流的影响 | 第56页 |
| ·DNA-[Cu(C_(16)H_(14)N_2O_2)]复合物的结合比及结合常数 | 第56-59页 |
| 3 小结 | 第59-60页 |
| 第四章 以3-氨基酚噁嗪为指示剂的DNA生物传感器的研究 | 第60-71页 |
| 1 实验部分 | 第60-62页 |
| ·仪器与试剂 | 第60-61页 |
| ·实验方法 | 第61-62页 |
| ·AP纯品的制备 | 第61页 |
| ·AP在玻碳电极上的电化学行为 | 第61页 |
| ·玻碳电极的预处理 | 第61页 |
| ·玻碳修饰电极的共价键合与DNA的固定 | 第61-62页 |
| ·修饰后玻碳电极上DNA的杂交 | 第62页 |
| ·指示剂的嵌入 | 第62页 |
| ·电化学测定 | 第62页 |
| 2 结果与讨论 | 第62-69页 |
| ·制备AP纯品的酶促反应过程 | 第62页 |
| ·AP纯品的紫外-可见光谱 | 第62-63页 |
| ·AP的电化学行为 | 第63-67页 |
| ·AP的循环伏安和微分脉冲伏安曲线 | 第63-64页 |
| ·AP在裸GCE、ssDNA/GCE、dsDNA/GCE上的电化学性质 | 第64-65页 |
| ·扫速对ssDNA/GCE、dsDNA/GCE循环伏安还原峰电流的影响 | 第65-67页 |
| ·DNA电化学传感器的制备 | 第67-69页 |
| ·杂交时间的影响 | 第67页 |
| ·pH值对DNA与AP反应的影响 | 第67页 |
| ·DNA电化学传感器的选择性 | 第67-68页 |
| ·DNA电化学传感器的检测线性范围与检测限 | 第68-69页 |
| ·杂交dsDNA修饰电极的稳定性 | 第69页 |
| 3 小结 | 第69-71页 |
| 第五章 以邻菲咯啉铜(Ⅱ)配合物为指示剂的DNA生物传感器的研究 | 第71-86页 |
| 1 实验部分 | 第71-74页 |
| ·仪器与试剂 | 第71-72页 |
| ·实验方法 | 第72-74页 |
| ·[Cu(H_2O)(phen)_2]·2ClO_4配合物的合成 | 第72-73页 |
| ·[Cu(H_2O)(phen)_2]~(2+)配合物与DNA相互作用的电化学研究 | 第73页 |
| ·[Cu(H_2O)(phen)_2]~(2+)配合物与DNA相互作用的紫外光谱研究 | 第73页 |
| ·[Cu(H_2O)(phen)_2]~(2+)配合物与DNA相互作用的荧光光谱研究 | 第73页 |
| ·玻碳电极的预处理 | 第73-74页 |
| ·玻碳修饰电极的共价键合与DNA的固定 | 第74页 |
| ·修饰后玻碳电极上DNA的杂交 | 第74页 |
| ·指示剂的嵌入 | 第74页 |
| ·电化学测定 | 第74页 |
| 2 结果与讨论 | 第74-85页 |
| ·[Cu(H_2O)(phen)_2]·2ClO_4的表征 | 第74-75页 |
| ·[Cu(H_2O)(phen)_2]·2ClO_4的元素分析 | 第74-75页 |
| ·[Cu(H_2O)(phen)_2]·2ClO_4的红外光谱分析 | 第75页 |
| ·[Cu(H_2O)(phen)_2]~(2+)与DNA相互作用的电化学研究 | 第75-80页 |
| ·pH值对[Cu(H_2O)(phen)_2]~(2+)与DNA相互作用的影响 | 第77页 |
| ·扫速对[Cu(H_2O)(phen)_2]~(2+)氧化峰电流的影响 | 第77-78页 |
| ·反应时间对[Cu(H_2O)(phen)_2]~(2+)与DNA相互作用的影响 | 第78页 |
| ·温度对[Cu(H_2O)(phen)_2]~(2+)与DNA相互作用的影响 | 第78-79页 |
| ·DNA-[Cu(H_2O)(phen)_2]~(2+)复合物的结合比及结合常数 | 第79-80页 |
| ·[Cu(H_2O)(phen)_2]~(2+)与DNA作用的紫外光谱研究 | 第80-81页 |
| ·[Cu(H_2O)(phen)_2]~(2+)与DNA相互作用的荧光光谱研究 | 第81-83页 |
| ·电化学传感器的研究 | 第83-85页 |
| ·玻碳修饰电极的电化学表征 | 第83页 |
| ·DNA电化学传感器的选择性 | 第83-85页 |
| ·线性范围和检测限 | 第85页 |
| 3 小结 | 第85-86页 |
| 第六章 以2,9-二甲基-1,10-邻菲咯啉铜为指示剂的DNA生物传感器的研究 | 第86-104页 |
| 1 实验部分 | 第86-89页 |
| ·仪器与试剂 | 第86-87页 |
| ·实验方法 | 第87-89页 |
| ·2,9-二甲基-1,10-邻菲咯啉铜配合物的合成 | 第87-88页 |
| ·邻菲咯啉铜配合物在玻碳电极上的电化学行为 | 第88页 |
| ·玻碳电极的预处理 | 第88页 |
| ·玻碳修饰电极的共价键合与DNA的固定 | 第88页 |
| ·修饰后玻碳电极上DNA的杂交 | 第88-89页 |
| ·指示剂的嵌入 | 第89页 |
| ·电化学测定 | 第89页 |
| 2 结果与讨论 | 第89-102页 |
| ·[Cu(dmp)(H_2O)Cl_2]的晶体结构 | 第89-90页 |
| ·[Cu(dmp)(H_2O)Cl_2]的电化学研究 | 第90-95页 |
| ·[Cu(dmp)(H_2O)Cl_2]的循环伏安曲线 | 第90-91页 |
| ·[Cu(dmp)(H_2O)Cl_2]与DNA相互作用的电化学研究 | 第91-92页 |
| ·pH对邻菲咯啉铜配合物氧化峰电流I_p的影响 | 第92页 |
| ·反应时间对邻菲咯啉铜配合物氧化峰电流I_(pa)的影响 | 第92-93页 |
| ·扫速对邻菲咯啉铜配合物氧化峰电流I_p的影响 | 第93-94页 |
| ·扫速对ssDNA/GCE、dsDNA/GCE循环伏安氧化峰电流影响 | 第94-95页 |
| ·DNA浓度对邻菲咯啉铜配合物氧化峰电流Ipa的影响 | 第95页 |
| ·DNA电化学传感器的研究 | 第95-102页 |
| ·杂交时间的影响 | 第95-96页 |
| ·pH值对DNA与[Cu(dmp)(H_2O)Cl_2]反应的影响 | 第96页 |
| ·ssDNA/GCE及dsDNA/GCE与[Cu(dmp)(H_2O)Cl_2]的作用 | 第96-98页 |
| ·扫速对[Cu(dmp)(H_2O)Cl_2]在dsDNA/GCE上峰电流的影响 | 第98页 |
| ·离子强度对dsDNA/GCE与[Cu(dmp)(H_2O)Cl_2]作用的影响 | 第98-99页 |
| ·DNA电化学传感器的选择性 | 第99-100页 |
| ·DNA电化学传感器的检测线性范围与检测限 | 第100-102页 |
| ·DNA电化学生物传感器的再生 | 第102页 |
| 3 小结 | 第102-104页 |
| 第七章 以邻菲咯啉钴(Ⅱ)配合物为指示剂的DNA生物传感器的研究 | 第104-119页 |
| 1 实验部分 | 第104-108页 |
| ·仪器与试剂 | 第104-105页 |
| ·实验方法 | 第105-108页 |
| ·邻菲咯啉钴(Ⅱ)配合物的合成 | 第105-106页 |
| ·[Co(phen)_2IP]~(2+)与DNA相互作用的电化学研究 | 第106页 |
| ·[Co(phen)_2IP]~(2+)与DNA相互作用的紫外光谱研究 | 第106-107页 |
| ·[Co(phen)_2IP]~(2+)与DNA相互作用的荧光光谱研究 | 第107页 |
| ·玻碳电极的预处理 | 第107页 |
| ·玻碳修饰电极的共价键合与DNA的固定 | 第107页 |
| ·修饰后玻碳电极上DNA的杂交 | 第107页 |
| ·指示剂的嵌入 | 第107-108页 |
| ·电化学测定 | 第108页 |
| 2 结果与讨论 | 第108-118页 |
| ·[Co(phen)_2IP]·2ClO_4·3H_2O的表征 | 第108-109页 |
| ·[Co(phen)_2IP]·2ClO_4·3H_2O的元素分析 | 第108页 |
| ·[Co(phen)_2IP]·2ClO_4·3H_2O的红外光谱分析 | 第108-109页 |
| ·[Co(phen)_2IP]~(2+)与DNA相互作用的电化学研究 | 第109-114页 |
| ·pH值对[Co(phen)_2IP]~(2+)与DNA相互作用的影响 | 第111页 |
| ·扫速对[Co(phen)_2IP]~(2+)氧化峰电流的影响 | 第111页 |
| ·反应时间对[Co(phen)_2IP]~(2+)与DNA相互作用的影响 | 第111-112页 |
| ·DNA浓度对[Co(phen)_2IP]~(2+)氧化峰电流的影响 | 第112页 |
| ·DNA-[Co(phen)_2IP]~(2+)复合物的结合比及结合常数 | 第112-114页 |
| ·[Co(phen)_2IP]~(2+)与DNA作用的紫外光谱研究 | 第114-115页 |
| ·[Co(phen)_2IP]~(2+)与DNA相互作用的荧光光谱研究 | 第115-117页 |
| ·DNA电化学传感器的选择性 | 第117-118页 |
| ·线性范围及检测限 | 第118页 |
| 3 小结 | 第118-119页 |
| 第八章 结论 | 第119-121页 |
| 1 论文总结 | 第119页 |
| 2 创新点 | 第119-120页 |
| 3 进一步的工作设想 | 第120-121页 |
| 参考文献 | 第121-132页 |
| 致谢 | 第132-133页 |
| 攻读学位期间发表及待发表的学术论文目录 | 第133-136页 |
