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两个花色素苷合成基因和三个不同启动子对植株颜色的影响

英文缩略表第1-10页
中文摘要第10-12页
英文摘要第12-14页
1 引言第14-33页
   ·成色作用第15页
   ·色素的生物合成第15-26页
     ·叶绿素的生物合成第16-17页
     ·花色苷的生物合成第17-22页
     ·类胡萝卜素的生物合成途径第22-25页
     ·三种主要色素在代谢途径中的位置第25-26页
   ·植物花色色素生物合成相关基因的特征第26-27页
     ·植物花色呈现需要多种基因协同表达第26-27页
     ·花色色素的生物合成必须由调节基因调节第27页
   ·叶片特异启动子与花特异启动子第27-29页
     ·叶片特异启动子第28-29页
     ·花特异表达启动子第29页
   ·植物花色的基因工程改良策略及进展第29-32页
     ·抑制合成途径限速酶的基因表达第29-30页
     ·导入调节基因第30-31页
     ·导入新的外源基因第31-32页
   ·本课题的研究目的和意义第32-33页
2 材料与方法第33-53页
   ·材料第33-34页
     ·植物材料第33页
     ·质粒与菌株第33页
     ·酶与生化试剂第33页
     ·PCR 引物第33-34页
   ·实验方法第34-53页
     ·矮牵牛CHSA 基因的克隆第34-35页
       ·CTAB 法提取矮牵牛基因组总DNA第34页
       ·总DNA 提取产物的纯化第34-35页
       ·CHSA 基因的PCR 扩增第35页
     ·矮牵牛F3’5’H 基因的克隆第35-37页
       ·TRIZOL法提取矮牵牛花总RNA第35-36页
       ·RNA 反转录及cDNA 纯化第36-37页
       ·F3’5’H 基因片段的PCR 扩增第37页
     ·拟南芥AP3 基因上游启动子的克隆第37-39页
       ·微量法提取拟南芥总 DNA第37-38页
       ·拟南芥AP3 基因上游启动子的克隆第38-39页
     ·矮牵牛CHSA和F3’5’H基因及拟南芥AP3启动子的克隆与测序第39-42页
       ·大肠杆菌感受态细胞的制备第39页
       ·目的基因电泳回收第39-40页
       ·目的基因片段与克隆载体的连接第40页
       ·转化及克隆筛选第40-41页
       ·碱法小量提取质粒DNA第41-42页
       ·序列测定第42页
     ·植物表达载体的构建第42-45页
       ·质粒DNA 的大量提取第42-43页
       ·克隆载体中目的片段的酶切及表达载体 pBI121 的酶切第43-44页
       ·表达载体的构建第44-45页
       ·表达载体的转化及克隆筛选第45页
     ·根癌农杆菌LBA4404 感受态细胞的制备及转化第45页
       ·农杆菌感受态细胞的制备第45页
       ·冻融法转化农杆菌第45页
     ·农杆菌介导法转化烟草第45-47页
       ·农杆菌的培养第45-46页
       ·烟草的转化第46-47页
     ·转基因烟草植株PCR 检测第47-48页
       ·CTAB 微量法提取烟草总DNA第47页
       ·转基因烟草植株的 PCR 筛选第47-48页
     ·Northern杂交分析第48-52页
       ·转基因烟草提取总RNA(Rnasey plant mini kit)第48-49页
       ·电泳,转膜第49-52页
     ·叶片叶绿素含量的测定第52-53页
3 结果与分析第53-73页
   ·矮牵牛中CHSA 基因的克隆及表达第53-61页
     ·矮牵牛中CHSA 基因的克隆第53-56页
     ·矮牵牛中CHSA 基因表达载体构建及转化第56-58页
       ·CHSA基因在克隆载体中连接方向的鉴定第56页
       ·CHSA基因表达载体的构建第56-57页
       ·CHSA基因表达载体转化农杆菌第57-58页
     ·转CHSA 基因烟草植株的获得及检测第58-61页
       ·转CHSA(+)基因烟草植株的表型及PCR 检测第58-59页
       ·转CHSA(-)基因烟草植株的表型及PCR 检测第59-60页
       ·CHSA基因表达情况与转基因烟草表型的关系第60-61页
       ·转CHSA 基因烟草叶片叶绿素含量第61页
   ·矮牵牛中F3’5’H 基因的克隆及表达第61-67页
     ·矮牵牛中F3’5’H 基因的克隆第61-63页
     ·矮牵牛中F3’5’H 基因表达载体构建及转化第63-65页
       ·PINZIP::F3’5’H 基因表达载体的构建及转化第63-64页
       ·CaMV35S::F3’5’H 基因表达载体的构建及转化第64-65页
     ·转F3’5’H 基因烟草植株的获得及检测第65-67页
       ·转F3’5’H 基因烟草植株的表型及PCR 检测第65-66页
       ·转F3’5’H 基因烟草植株的RT-PCR 检测第66-67页
       ·转F3’5’H 基因烟草植株叶绿素含量第67页
   ·拟南芥AP3 基因启动子的克隆及表达第67-72页
     ·拟南芥中AP3 基因启动子的克隆第67-68页
     ·拟南芥AP3 启动子表达载体构建及转化第68-72页
       ·AP3 启动子-pBI121(GUS)表达载体的构建第68-69页
       ·AP3 启动子::F3’5’H 表达载体的构建第69-71页
       ·AP3 启动子::F3’5’H 表达载体转化农杆菌第71页
       ·AP3 启动子::F3’5’H 基因转化烟草第71-72页
   ·转基因烟草植株生长后期叶片颜色的变化第72-73页
4 讨论第73-77页
   ·矮牵牛CHSA 基因的表达与植株表型的关系第73-74页
   ·矮牵牛F3’5’H 基因的表达与植株表型的关系第74-75页
   ·转基因烟草植株表型多样性第75-76页
   ·转基因植株生长后期叶片颜色的恢复第76-77页
5 结论第77-78页
参考文献第78-87页
致谢第87页

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