| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-30页 |
| ·细胞程序性死亡研究进展 | 第9-17页 |
| ·植物PCD 的形态学特征 | 第9-10页 |
| ·植物PCD 的DNA 特征 | 第10页 |
| ·凋亡细胞超微结构的变化 | 第10-11页 |
| ·植物界PCD 的存在 | 第11-13页 |
| ·植物花器官形成中的PCD | 第13-14页 |
| ·植物PCD 检测方法 | 第14-17页 |
| ·分子标记研究进展 | 第17-29页 |
| ·DNA 分子标记的类型及特点 | 第17-22页 |
| ·RAPD 标记在蔬菜遗传育种研究中的应用 | 第22-28页 |
| ·分子标记辅助选择蔬菜作物育种中的应用 | 第28-29页 |
| ·本研究的目的意义 | 第29-30页 |
| 第二章 萝卜花蕾败育中的细胞形态学观察 | 第30-39页 |
| ·试验材料 | 第30页 |
| ·试验方法 | 第30-31页 |
| ·石蜡切片的制备 | 第30-31页 |
| ·半薄切片的制备 | 第31页 |
| ·超薄切片的制备 | 第31页 |
| ·结果与分析 | 第31-37页 |
| ·总DNA 电泳图谱比较 | 第31-32页 |
| ·光镜下正常花蕾与败育花蕾的细胞结构的变化 | 第32-34页 |
| ·电镜下正常花蕾与败育花蕾细胞超微结构的变化 | 第34-37页 |
| ·讨论 | 第37-39页 |
| ·萝卜花蕾败育与细胞程序性凋亡 | 第37页 |
| ·样品制备过程中应注意的问题 | 第37-39页 |
| 第三章 小白菜裂叶性状的分子标记 | 第39-47页 |
| ·试验材料 | 第39-40页 |
| ·供试材料 | 第39页 |
| ·酶及主要试剂 | 第39页 |
| ·主要仪器设备 | 第39-40页 |
| ·试验方法 | 第40-41页 |
| ·小白菜单株总DNA 的小量法提取 | 第40页 |
| ·DNA 池的构建 | 第40页 |
| ·小白菜裂叶性状的RAPD 标记 | 第40页 |
| ·小白菜裂叶性状的SSR 标记 | 第40-41页 |
| ·小白菜裂叶性状的SRAP 标记 | 第41页 |
| ·结果与分析 | 第41-45页 |
| ·小白菜裂叶性状的遗传规律 | 第41页 |
| ·白菜基因组DNA 的质量 | 第41-42页 |
| ·多态性RAPD 引物的筛选分析 | 第42页 |
| ·特异引物S_(1396)-500 在F_2 群体中的分离情况 | 第42-44页 |
| ·多态性SSR 引物的筛选分析 | 第44页 |
| ·多态性SRAP 引物的筛选分析 | 第44-45页 |
| ·讨论 | 第45-47页 |
| ·总DNA 提取注意问题 | 第45页 |
| ·用BSA 法进行RAPD 分子标记研究 | 第45-46页 |
| ·RAPD-PCR 操作过程中应注意的事项 | 第46-47页 |
| 第四章 结论 | 第47-48页 |
| ·萝卜败蕾的显微观察部分 | 第47页 |
| ·小白菜裂叶性状分子标记部分 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 作者简介 | 第57页 |