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家蚕杆状病毒iap2基因启动子结合蛋白筛选及其功能研究

摘要第4-5页
Abstract第5-6页
缩略语第7-13页
第一章 绪论第13-20页
    1. 家蚕杆状病毒基因研究现状简介第13-15页
        1.1 家蚕杆状病毒基因研究概况第13页
        1.2 家蚕杆状病毒凋亡抑制基因及其机制研究现状第13-14页
        1.3 家蚕杆状病毒基因表达时相研究概况第14-15页
    2. 家蚕杆状病毒相关基因研究现状第15-18页
        2.1 lef-6研究现状第15-16页
        2.2 bro-d研究现状第16-17页
        2.3 lef-5研究现状第17页
        2.4 odv家族基因研究现状第17-18页
        2.5 alk-exo研究现状第18页
    3. 酵母单杂交系统简介第18-20页
        3.1 酵母单杂交原理和方法第18-19页
        3.2 酵母单杂交优点及应用第19-20页
第二章 实验设计方案第20-22页
    1. 研究目的与意义第20页
    2. 研究主要内容第20-21页
    3. 实验流程图第21-22页
第三章 BmNPV iap2基因启动子结合蛋白的筛选第22-36页
    1. 材料和试剂第22页
        1.1 菌株和质粒第22页
        1.2 试剂及技术支持第22页
    2. 实验方法第22-31页
        2.1 构建诱饵基因表达载体piap2130-AbAi第22-24页
            2.1.1 iap2130片段的合成第22-23页
            2.1.2 piap2130-AbAi载体的构建第23-24页
        2.2 重组质粒piap2130-AbAi导入酵母菌基因组第24-26页
            2.2.1 重组质粒piap2130-AbAi线性化第24-25页
            2.2.2 酵母感受态的制备第25页
            2.2.3 转化酵母菌感受态第25-26页
            2.2.4 酵母诱饵基因PCR鉴定第26页
        2.3 抑制酵母自激活作用抗生素浓度测定第26-27页
        2.4 cDNA文库构建第27-30页
            2.4.1 BmNPV感染BmN后总RNA的提取第27页
            2.4.2 纯化及浓缩mRNA第27-28页
            2.4.3 合成cDNA第一链第28-29页
            2.4.4 用LD(long distance)-PCR合成双链cDNA及纯化第29-30页
        2.5 cDNA文库转化含有诱饵基因酵母菌第30-31页
            2.5.1 酵母菌Y1HGold-piap2130-AbAi感受态制备第30页
            2.5.2 转化酵母菌Y1HGold-piap2130-AbAi第30页
            2.5.3 阳性克隆鉴定第30-31页
    3. 结果与分析第31-34页
        3.1 诱饵基因iap2130片段合成鉴定第31-32页
        3.2 质粒piap2130-AbAi PCR鉴定和双酶切鉴定第32页
        3.3 酵母诱饵基因PCR结果鉴定第32-33页
        3.4 抑制酵母自激活作用抗生素浓度第33页
        3.5 酵母单杂交筛选系统cDNA文库构建鉴定第33页
        3.6 iap2130互作蛋白及其编码基因第33-34页
    4. 讨论第34-36页
第四章 bro-d对病毒复制转录及细胞凋亡的影响第36-53页
    1. 材料与试剂第36页
        1.1 菌株和质粒第36页
        1.2 试剂和技术支持第36页
    2. 方法第36-45页
        2.1 bro-d缺失型病毒bro-d-ko-Bacmid构建第36-39页
            2.1.1 BmNPV线性化bro-d基因打靶片段的制备第36页
            2.1.2 大肠杆菌DH10Bac(不含pKD46)感受态制备第36-37页
            2.1.3 DH10Bac (pKD46)感受态制备第37页
            2.1.4 bro-d基因打靶片段转化DH10Bac (pKD46)感受态及鉴定第37-39页
        2.2 bro-d缺失后BmNPV基因组复制水平的分析第39-40页
            2.2.1 转染后细胞内总DNA的提取第39-40页
            2.2.2 gp41含量标准曲线的qRT-PCR测绘第40页
            2.2.3 各细胞样总DNA中的gp41含量的qRT-PCR分析第40页
        2.3 bro-d缺失后BmNPV基因组转录水平的分析第40-41页
            2.3.1 转染后细胞总RNA的提取和消化第40-41页
            2.3.2 总RNA逆转录为cDNA第41页
            2.3.3 各细胞样总RNA中各基因含量的qRT-PCR分析第41页
        2.4 pIEx-1-bro-d瞬时表达载体的构建第41-43页
        2.5 bro-d缺失后细胞凋亡相关分析第43-45页
            2.5.1 bro-d缺失对iap2转录水平的影响第43页
            2.5.2 bro-d缺失后细胞活力变化的MTT分析第43页
            2.5.3 bro-d缺失后细胞凋亡相关因子的Western blot分析第43-45页
    3. 结果与分析第45-51页
        3.1 bro-d线性化打靶片段制备结果鉴定第45页
        3.2 bro-d缺失型病毒bro-d-ko-Bacmid构建的鉴定第45-46页
        3.3 复制指数标准曲线第46-47页
        3.4 bro-d缺失对BmNPV基因组复制的影响第47-48页
        3.5 bro-d缺失对BmNPV基因组转录的影响第48页
        3.6 pIEx-1-bro-d质粒构建鉴定第48-49页
        3.7 bro-d缺失后细胞凋亡相关分析第49-51页
            3.7.1 bro-d缺失对iap2转录水平影响第49页
            3.7.2 bro-d缺失后细胞活力变化的MTT分析第49-50页
            3.7.3 bro-d缺失后细胞凋亡相关因子的Western blot分析第50-51页
    4. 讨论第51-53页
第五章 lef-6对病毒复制转录影响及抑制细胞凋亡功能研究第53-63页
    1. 材料与试剂第53页
    2. 方法第53-56页
        2.1 lef-6缺失型病毒lef-6-ko-Bacmid构建第53-54页
            2.1.1 BmNPV线性化lef-6基因打靶片段的制备第53页
            2.1.2 大肠杆菌DH10Bac(不含pKD46)感受态制备第53页
            2.1.3 DH10Bac (pKD46)感受态制备第53页
            2.1.4 lef-6基因打靶片段转化DH10Bac (pKD46)感受态及鉴定第53-54页
        2.2 lef-6缺失后BmNPV基因组复制水平的分析第54页
            2.2.1 转染后细胞总DNA的提取第54页
            2.2.2 gp41含量标准曲线的qRT-PCR测绘第54页
            2.2.3 各细胞样总DNA中的gp41含量的qRT-PCR分析第54页
        2.3 lef-6缺失后BmNPV基因组转录水平的分析第54-55页
            2.3.1 转染后细胞总RNA的提取和消化第54页
            2.3.2 总RNA逆转录为cDNA第54页
            2.3.3 各细胞样总RNA中各基因含量的qRT-PCR分析第54-55页
        2.4 pIEx-1-lef-6瞬时表达载体的构建第55页
        2.5 lef-6缺失后细胞凋亡分析第55-56页
            2.5.1 lef-6缺失对iap2转录水平的qRT-PCR分析第55页
            2.5.2 lef-6缺失后细胞活力的MTT分析第55页
            2.5.3 lef-6缺失后细胞凋亡相关因子的Western blot分析第55-56页
    3. 结果与分析第56-61页
        3.1 lef-6线性化打靶片段的制备第56页
        3.2 lef-6缺失型病毒lef-6-ko-Bacmid构建的鉴定第56-57页
        3.3 lef-6缺失后BmNPV基因组复制的影响第57-58页
        3.4 lef-6缺失对BmNPV基因组转录的影响第58页
        3.5 pIEx-1-lef-6质粒构建鉴定第58-59页
        3.6 lef-6缺失后细胞凋亡的分析第59-61页
            3.6.1 lef-6缺失对iap2转录水平的影响第59页
            3.6.2 lef-6缺失后细胞活力的MTT分析第59-60页
            3.6.3 lef-6缺失后细胞凋亡相关因子的Western blot分析第60-61页
    4. 讨论第61-63页
结论第63-64页
附录第64-66页
参考文献第66-72页
致谢第72页

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