中文摘要 | 第1-17页 |
Abstract | 第17-23页 |
符号说明 | 第23-26页 |
前言 | 第26-34页 |
实验材料 | 第34-43页 |
1. 实验动物 | 第34页 |
2. 化学试剂 | 第34-37页 |
3. 试剂配制 | 第37-41页 |
4. 主要仪器设备 | 第41-43页 |
第一部分 AB25-35诱导细胞损伤及其纤维形成的鉴定 | 第43-50页 |
1. 实验方法 | 第43-44页 |
·大鼠神经细胞原代培养 | 第43页 |
·Aβ25-35浓度的确定 | 第43页 |
·透射电镜(TEM)观察Aβ25-35纤维形成 | 第43-44页 |
·硫磺素T(Th-T)荧光分析 | 第44页 |
2. 数据处理 | 第44页 |
3. 实验结果 | 第44-47页 |
·神经元形态学观察 | 第44-45页 |
·Aβ25-35浓度的确定 | 第45-46页 |
·透射电镜(TEM)观察Aβ25-35纤维形成 | 第46页 |
·硫磺素T(Th-T)荧光分析 | 第46-47页 |
4. 讨论 | 第47-49页 |
5. 结论 | 第49-50页 |
第二部分 ULMWH对AB25-35诱导神经细胞凋亡的影响 | 第50-67页 |
1. 实验方法 | 第50-54页 |
·大鼠神经细胞原代培养 | 第50页 |
·实验分组 | 第50页 |
·细胞活力测定 | 第50-51页 |
·LDH释放率测定 | 第51页 |
·Annexin V/PI双染实验 | 第51页 |
·Hoechst 33258染色实验 | 第51-52页 |
·TUNEL实验 | 第52-53页 |
·Western blotting实验 | 第53页 |
·钙离子浓度测定 | 第53-54页 |
·Fura-2/AM负载 | 第53-54页 |
·荧光测定 | 第54页 |
·[Ca~(2+)]i的计算 | 第54页 |
2. 数据处理 | 第54页 |
3. 实验结果 | 第54-63页 |
·ULMWH对Aβ25-35诱导的细胞活力的影响 | 第54-55页 |
·ULMWH对Aβ25-35诱导的LDH释放率的影响 | 第55-56页 |
·ULMWH对Aβ25-35诱导的神经细胞凋亡率的影响 | 第56-59页 |
·ULMWH对Aβ25-35诱导的神经细胞核形态的影响 | 第59-60页 |
·ULMWH对Aβ25-35诱导的神经细胞DNA的影响 | 第60-61页 |
·ULMWH对Aβ25-35诱导的Caspase-3、Bcl-2表达的影响 | 第61-62页 |
·ULMWH对Aβ25-35诱导的[Ca~(2+)]i的影响 | 第62-63页 |
4. 讨论 | 第63-66页 |
5. 结论 | 第66-67页 |
第三部分 ULMWH对神经细胞内钙浓度的影响 | 第67-78页 |
1. 实验方法 | 第67-71页 |
·大鼠神经细胞原代培养 | 第67页 |
·细胞内钙离子浓度的测定 | 第67-68页 |
·Fura-2/AM负载 | 第67页 |
·荧光测定 | 第67-68页 |
·[Ca~(2+)]i的计算 | 第68页 |
·ULMWH对静息状态下神经细胞[Ca~(2+)]i的影响 | 第68页 |
·ULMWH对KCl诱导的神经细胞外钙内流的的影响 | 第68页 |
·ULMWH对谷氨酸诱导的神经细胞外钙内流的的影响 | 第68-69页 |
·ULMWH对IP_3诱导的神经细胞内钙释放的的影响 | 第69页 |
·ULMWH对IP_3诱导的线粒体和内质网内钙释放的的影响 | 第69-71页 |
·神经细胞线粒体的提取 | 第69-70页 |
·神经细胞内质网的提取 | 第70页 |
·线粒体和内质网内钙释放的测定 | 第70-71页 |
2. 数据处理 | 第71页 |
3. 实验结果 | 第71-76页 |
·ULMWH对静息状态下神经细胞[Ca~(2+)]i的影响 | 第71-72页 |
·ULMWH对KCl诱导的神经细胞外钙内流的的影响 | 第72-73页 |
·ULMWH对谷氨酸诱导的神经细胞外钙内流的的影响 | 第73-74页 |
·ULMWH对IP_3诱导的神经细胞内钙释放的的影响 | 第74-75页 |
·ULMWH对IP_3诱导的线粒体和内质网内钙释放的的影响 | 第75-76页 |
4. 讨论 | 第76-77页 |
5. 结论 | 第77-78页 |
参考文献 | 第78-87页 |
致谢 | 第87-88页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第88-89页 |
附 已发表论文 | 第89-109页 |
学位论文评阅及答辩情况表 | 第109页 |