摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
1 前言 | 第10-13页 |
1.1 选题来源 | 第10页 |
1.2 罗耳阿太菌胞外多糖国内外研究进展 | 第10页 |
1.3 微量元素锌 | 第10-11页 |
1.4 缺锌的危害 | 第11页 |
1.5 多糖锌复合物的国内外研究进展 | 第11-12页 |
1.6 本研究的目的和意义 | 第12页 |
1.7 研究的主要内容 | 第12-13页 |
2 材料与方法 | 第13-21页 |
2.1 材料与仪器 | 第13-14页 |
2.1.1 主要材料 | 第13页 |
2.1.2 其他材料 | 第13-14页 |
2.1.3 主要仪器 | 第14页 |
2.2 试验方法 | 第14-21页 |
2.2.1 多糖及蛋白含量的测定 | 第14-15页 |
2.2.2 Zn~(2+)螯合率的测定 | 第15页 |
2.2.3 AEPS的提取 | 第15页 |
2.2.4 AEPS中蛋白的脱除 | 第15-17页 |
2.2.5 AEPS的分离纯化 | 第17页 |
2.2.6 AEPS-Zn制备工艺优化 | 第17-18页 |
2.2.7 不同组分理化特性分析 | 第18-19页 |
2.2.8 AEPS-Zn结构表征 | 第19页 |
2.2.9 AEPS-Zn体外抗氧化活性测定 | 第19页 |
2.2.10 AEPS-Zn生物稳定性测定 | 第19-20页 |
2.2.11 AEPS-Zn小鼠体内试验 | 第20-21页 |
3 结果与分析 | 第21-57页 |
3.1 标准曲线的绘制 | 第21-22页 |
3.2 蛋白的脱除 | 第22-30页 |
3.2.1 Sevage法 | 第22页 |
3.2.2 木瓜蛋白酶法 | 第22-29页 |
3.2.3 木瓜蛋白酶-Sevage结合法 | 第29页 |
3.2.4 不同蛋白脱除方法比较 | 第29-30页 |
3.3 AEPS的分离纯化 | 第30-33页 |
3.3.1 SephacrylS-300和200分离纯化 | 第30-32页 |
3.3.2 HPGPC分离纯化 | 第32-33页 |
3.4 AEPS-Zn制备工艺优化 | 第33-41页 |
3.4.1 不同蛋白脱除方法对多糖螯合锌效果的影响 | 第33页 |
3.4.2 锌源的选择 | 第33-34页 |
3.4.3 单因素试验 | 第34-37页 |
3.4.4 响应面试验结果 | 第37-39页 |
3.4.5 响应面分析 | 第39-40页 |
3.4.6 验证试验结果 | 第40-41页 |
3.4.7 不同多糖组分Zn2+螯合率 | 第41页 |
3.5 不同多糖组分理化特性分析 | 第41-44页 |
3.5.1 一般理化性质 | 第41-42页 |
3.5.2 分子量及GC-MS单糖组成分析 | 第42-44页 |
3.6 AEPS-Zn结构表征 | 第44-48页 |
3.6.1 外貌观察 | 第44页 |
3.6.2 SEM分析 | 第44-45页 |
3.6.3 FTIR分析 | 第45-46页 |
3.6.4 NMR分析 | 第46-48页 |
3.7 AEPS-Zn体外生物活性 | 第48-52页 |
3.7.1 AEPS-Zn抗氧化活性 | 第48-51页 |
3.7.2 生物稳定性 | 第51-52页 |
3.8 AEPS-Zn小鼠体内试验 | 第52-57页 |
3.8.1 急性毒性试验 | 第52页 |
3.8.2 AEPS-Zn对小鼠体重和脏器指数的影响 | 第52-54页 |
3.8.3 AEPS-Zn对小鼠肝脏和血清中金属离子含量的影响 | 第54-55页 |
3.8.4 AEPS-Zn对小鼠AKP、LZM、T-SOD和GSH-Px活性的影响 | 第55-57页 |
4 讨论 | 第57-58页 |
4.1 AEPS-Zn的制备 | 第57页 |
4.1.1 蛋白的脱除 | 第57页 |
4.1.2 AEPS-Zn螯合工艺优化 | 第57页 |
4.2 AEPS-Zn的结构表征 | 第57页 |
4.3 AEPS-Zn的生物活性 | 第57-58页 |
5 结论 | 第58-59页 |
5.1 AEPS-Zn的制备 | 第58页 |
5.2 AEPS和AEPS-Zn的特性分析及结构表征 | 第58页 |
5.3 AEPS-Zn的生物活性 | 第58-59页 |
参考文献 | 第59-64页 |
作者简介 | 第64-65页 |
致谢 | 第65页 |