摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4页 |
1 绪论 | 第9-16页 |
1.1 向日葵研究概况 | 第9-12页 |
1.1.1 向日葵的植物学特征 | 第9页 |
1.1.2 向日葵的资源分布 | 第9页 |
1.1.3 向日葵的化学成分 | 第9-10页 |
1.1.4 向日葵的生物学活性 | 第10-11页 |
1.1.5 向日葵的药理活性 | 第11-12页 |
1.2 植物源组分抗氧化活性研究 | 第12-13页 |
1.2.1 自由基理论 | 第12页 |
1.2.2 植物抗氧化剂的主要活性成分 | 第12-13页 |
1.3 植物源组分抑菌机制研究 | 第13-14页 |
1.3.1 改变细胞膜的通透性 | 第13页 |
1.3.2 破坏细胞壁的完整性 | 第13页 |
1.3.3 抑制菌体蛋白质的合成 | 第13-14页 |
1.3.4 抑制菌体遗传物质的合成 | 第14页 |
1.3.5 制菌体呼吸代谢 | 第14页 |
1.4 立题依据与主要内容 | 第14-16页 |
1.4.1 立题背景 | 第14-15页 |
1.4.2 研究目的、意义 | 第15页 |
1.4.3 主要内容 | 第15-16页 |
2 向日葵茎髓提取物的制备和抗氧化活性评价 | 第16-23页 |
2.1 实验材料 | 第16-17页 |
2.1.1 实验仪器 | 第16页 |
2.1.2 实验试剂 | 第16-17页 |
2.2 实验方法 | 第17-18页 |
2.2.1 向日葵茎髓醇提取物及醇提物中不同萃取物的制备 | 第17页 |
2.2.2 总酚含量的测定 | 第17页 |
2.2.3 总黄酮含量的测定 | 第17页 |
2.2.4 DPPH自由基清除能力的测定 | 第17-18页 |
2.2.5 ABTS~+·清除能力的测定 | 第18页 |
2.2.6 总还原能力的测定 | 第18页 |
2.2.7 统计学分析 | 第18页 |
2.3 结果与讨论 | 第18-21页 |
2.3.1 活性成分含量分析 | 第18-19页 |
2.3.2 抗氧化活性分析 | 第19-20页 |
2.3.3 相关性分析 | 第20页 |
2.3.4 总还原能力 | 第20-21页 |
2.4 本章小结 | 第21-23页 |
3 向日葵茎髓醇提物中不同萃取物抑菌活性研究 | 第23-28页 |
3.1 实验材料 | 第23页 |
3.1.1 实验仪器 | 第23页 |
3.1.2 实验试剂 | 第23页 |
3.1.3 供试菌种 | 第23页 |
3.2 实验方法 | 第23-25页 |
3.2.1 菌种的活化与液体培养 | 第23-24页 |
3.2.2 抑菌圈大小的测定 | 第24页 |
3.2.3 最低抑菌浓度(MIC)的测定 | 第24页 |
3.2.4 半数抑制浓度(IC_(50))的测定 | 第24-25页 |
3.2.5 统计学分析 | 第25页 |
3.3 结果与讨论 | 第25-27页 |
3.3.1 抑菌圈大小的测定结果 | 第25页 |
3.3.2 最低抑菌浓度(MIC)的测定结果 | 第25-26页 |
3.3.3 半数抑制浓度(IC_(50))的测定结果 | 第26页 |
3.3.4 相关性分析 | 第26-27页 |
3.4 本章小结 | 第27-28页 |
4 向日葵茎髓醇提物中乙酸乙酯萃取物抑菌机制研究 | 第28-41页 |
4.1 实验材料 | 第28-29页 |
4.1.1 实验仪器 | 第28页 |
4.1.2 实验试剂 | 第28页 |
4.1.3 供试菌种 | 第28-29页 |
4.2 实验方法 | 第29-30页 |
4.2.1 扫描电镜样品制备 | 第29页 |
4.2.2 菌悬液电导率的测定 | 第29页 |
4.2.3 菌悬液碱性磷酸酶含量的测定 | 第29页 |
4.2.4 菌悬液可溶性蛋白含量的测定 | 第29-30页 |
4.2.5 菌体DNA含量变化的测定 | 第30页 |
4.3 结果与讨论 | 第30-39页 |
4.3.1 EE对细菌微观形态的影响 | 第30-32页 |
4.3.2 菌悬液电导率的测定结果 | 第32-33页 |
4.3.3 菌悬液碱性磷酸酶含量的测定结果 | 第33-35页 |
4.3.4 菌悬液可溶性蛋白含量的测定结果 | 第35-36页 |
4.3.5 EE对菌体荧光强度的影响结果 | 第36-37页 |
4.3.6 菌体DNA、RNA含量变化的测定结果 | 第37-39页 |
4.4 本章小结 | 第39-41页 |
结论 | 第41-42页 |
参考文献 | 第42-48页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第48-49页 |
致谢 | 第49-50页 |