首页--医药、卫生论文--肿瘤学论文--消化系肿瘤论文--胰腺肿瘤论文

HIF-1调控MAN2A1参与胰腺癌转移分子机制及临床意义

中文摘要第4-7页
Abstract第7-9页
缩略语/符号说明第12-13页
前言第13-15页
一、MAN2A1蛋白在PDAC组织中的表达及意义第15-24页
    1.1 对象和方法第15-18页
        1.1.1 临床组织标本与病例随访等资料第15页
        1.1.2 主要的试剂第15-16页
        1.1.5 主要的抗体第16页
        1.1.6 主要的试剂配置方法第16-17页
        1.1.7 主要的设备、仪器第17页
        1.1.8 实验的步骤与方法第17-18页
        1.1.9 统计学结果分析第18页
    1.2 结果分析第18-22页
        1.2.1 PDAC患者的基本病例数据信息第18-19页
        1.2.2 HIF-1α与MAN2A1在PDAC组织标本中的表达及相关性第19-21页
        1.2.3 MAN2A1的表达水平与临床病理学参数之间的关系第21页
        1.2.4 MAN2A1与PDAC患者预后的关系第21-22页
    1.3 讨论第22-23页
    1.4 小结第23-24页
二、MAN2A1在PDAC细胞系中的表达第24-40页
    2.1 对象和方法第24-37页
        2.1.1 主要细胞系第24页
        2.1.2 抗体及试剂盒第24页
        2.1.3 主要试剂第24-25页
        2.1.4 主要的试剂配制第25-28页
        2.1.5 主要仪器及设备第28-29页
        2.1.6 主要的实验方法第29-37页
    2.2 结果第37-38页
        2.2.1 MAN2A1在PDAC细胞系中的蛋白表达第37页
        2.2.2 免疫荧光检验MAN2A1在PDAC细胞中的表达定位第37页
        2.2.3 MAN2A1在PDAC患者癌及癌旁组织中的蛋白表达第37-38页
        2.2.4 MAN2A1在PDAC细胞系中的mRNA表达第38页
    2.3 讨论第38-39页
    2.4 小结第39-40页
三、HIF-1α对MAN2A1表达的影响及其调节机制第40-55页
    3.1 对象和方法第40-49页
        3.1.1 主要PDAC系及菌株第40页
        3.1.2 质粒第40页
        3.1.3 主要试剂第40-41页
        3.1.4 主要试剂配置第41-42页
        3.1.5 主要仪器及设备第42-43页
        3.1.6 实验方法第43-49页
    3.2 结果第49-54页
        3.2.1 常/乏氧状态下MAN2A1及HIF-1α的蛋白表达第49-50页
        3.2.2 RNA干扰及过表达HIF-1α对MAN2A1蛋白表达的影响第50-51页
        3.2.3 RNA干扰HIF-1α对MAN2A1蛋白mRNA的影响第51页
        3.2.4 HIF-1α直接结合于MAN2A1基因启动子区第51-52页
        3.2.5 HIF-1α调节MAN2A1转录的模式分析第52-54页
    3.3 讨论第54页
    3.4 小结第54-55页
四、PDAC细胞MAN2A1对侵袭转移的作用及机制第55-64页
    4.1 对象和方法第55-60页
        4.1.1 主要的细胞系第55页
        4.1.2 主要的试剂第55页
        4.1.4 主要仪器及设备第55-56页
        4.1.5 主要实验方法第56-60页
    4.2 结果第60-62页
        4.2.1 干扰MAN2A1对PDAC细胞侵袭能力的影响第60-61页
        4.2.2 干扰MAN2A1对PDAC细胞侵袭相关因子的影响第61-62页
    4.3 讨论第62-63页
    4.4 小结第63-64页
全文总结第64-65页
论文创新点第65-66页
论文不足点第66-67页
参考文献第67-71页
发表论文和参加科研情况说明第71-72页
综述 MAN2A1在肿瘤中的研究进展第72-85页
    综述参考文献第77-85页
致谢第85-86页
个人简历第86页

论文共86页,点击 下载论文
上一篇:缓释Ⅵ型胶原诱导巨噬细胞极化促进大鼠坐骨神经缺损再生的应用研究
下一篇:眼眶IgG4相关性疾病的临床研究