| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-10页 |
| 缩略词表 | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 1 材料与方法 | 第16-30页 |
| 1.1 实验仪器 | 第16页 |
| 1.2 抗体和主要试剂 | 第16-17页 |
| 1.3 主要试剂配制 | 第17-20页 |
| 1.3.1 细菌培养的主要试剂 | 第17-18页 |
| 1.3.2 分子试剂配方 | 第18页 |
| 1.3.3 Western blot所用试剂 | 第18-20页 |
| 1.3.4 细胞培养试剂的配方 | 第20页 |
| 1.4 实验方法 | 第20-30页 |
| 1.4.1 分子生物学方面 | 第20-23页 |
| 1.4.2 细胞培养 | 第23-24页 |
| 1.4.3 免疫印迹(Western Blot) | 第24-26页 |
| 1.4.4 C57小鼠剥离晶状体 | 第26页 |
| 1.4.5 核质分离 | 第26-27页 |
| 1.4.6 免疫沉淀实验 | 第27页 |
| 1.4.7 组织免疫荧光 | 第27-30页 |
| 2 实验结果 | 第30-42页 |
| 2.1 订制的Hsf4b/S299位点的磷酸化抗体能特异性识别S299磷酸化的Hsf4b | 第30-32页 |
| 2.2 顺铂(cis)、MG132和EGF可诱导Hsf4b/S299磷酸化 | 第32-33页 |
| 2.3 ERK 1/2激酶促进Hsf4b/S299位点的磷酸化修饰 | 第33-36页 |
| 2.4 MEK 1-ERK 1/2激活的Hsf4b/S299位点的磷酸化 | 第36-37页 |
| 2.5 Mek 1-ERK 1/2介导的Hsf4b/S299位点的磷酸化抑制Hsf4b的活性 | 第37-39页 |
| 2.6 Hsf4b和p-Hsf4b/S299在C57小鼠晶状体中的时空表达 | 第39-40页 |
| 2.7 ERK 1/2激酶参与晶状体中Hsf4b/S299位点的磷酸化修饰及其活性 | 第40-42页 |
| 讨论 | 第42-46页 |
| 结论 | 第46-48页 |
| 参考文献 | 第48-50页 |
| 综述 | 第50-60页 |
| 参考文献 | 第57-60页 |
| 致谢 | 第60-62页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第62-63页 |
