| 摘要 | 第11-14页 |
| 背景 | 第11页 |
| 目的 | 第11-12页 |
| 方法 | 第12页 |
| 结果 | 第12-13页 |
| 结论 | 第13页 |
| 关键词 | 第13-14页 |
| ABSTRACT | 第14-17页 |
| BACKGROUND | 第14-15页 |
| OBJECTIVE | 第15页 |
| METHODS | 第15-16页 |
| RESULTS | 第16页 |
| CONCLUTION | 第16-17页 |
| KEYWORDS | 第17-18页 |
| 实验一 二氧化钛纳米管涂层的制备 | 第18-23页 |
| 1 前言 | 第18页 |
| 2 材料 | 第18页 |
| 3 方法 | 第18-19页 |
| 3.1 试样制备 | 第18-19页 |
| 3.2 样品表征 | 第19页 |
| 4 结果 | 第19-20页 |
| 4.1 样品表面SEM观察 | 第19-20页 |
| 4.2 表面矿像分析 | 第20页 |
| 5 讨论 | 第20-21页 |
| 6 结论 | 第21-23页 |
| 实验二 氧化钛纳米管直径大小影响破骨细胞生成和活性及间充质干细胞矿化 | 第23-35页 |
| 1 前言 | 第23-24页 |
| 2 材料 | 第24页 |
| 3 方法 | 第24-28页 |
| 3.1 不同直径氧化钛纳米管涂层的制备 | 第24页 |
| 3.2 试样表面表征 | 第24页 |
| 3.3 细胞培养 | 第24-25页 |
| 3.4 破骨细胞actin荧光染色和细胞计数 | 第25页 |
| 3.5 抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)染色 | 第25-26页 |
| 3.6 TRAP活性 | 第26页 |
| 3.7 破骨活性相关基因表达 | 第26-27页 |
| 3.8 间充质干细胞(MSCs)基质矿化 | 第27-28页 |
| 3.9 统计分析 | 第28页 |
| 4 结果 | 第28-33页 |
| 4.1 材料的表征 | 第28页 |
| 4.2 材料表面破骨细胞形成 | 第28-30页 |
| 4.3 TRAP染色和活性检测 | 第30-31页 |
| 4.4 破骨细胞活性相关基因表达 | 第31-32页 |
| 4.5 MSCs基质矿化 | 第32-33页 |
| 5 讨论 | 第33-34页 |
| 6 结论 | 第34-35页 |
| 实验三 锌加载的氧化钛纳米管涂层抗菌和促进骨整合性能的体内外研究 | 第35-55页 |
| 1 前言 | 第35-36页 |
| 2 材料 | 第36页 |
| 3 方法 | 第36-43页 |
| 3.1 样品制备 | 第36-37页 |
| 3.2 样品表面形貌和化学分析 | 第37页 |
| 3.3 锌的加载和缓释 | 第37页 |
| 3.4 蛋白吸附实验 | 第37-38页 |
| 3.5 细胞培养 | 第38页 |
| 3.6 细胞粘附 | 第38-39页 |
| 3.7 乳酸脱氢酶(LDH)活性 | 第39页 |
| 3.8 细胞增殖 | 第39页 |
| 3.9 材料表面细胞形态 | 第39页 |
| 3.10 细胞内总蛋白和碱性磷酸酶活性 | 第39-40页 |
| 3.11 矿化基质 | 第40-41页 |
| 3.12 成骨相关基因表达 | 第41-42页 |
| 3.13 抗菌实验 | 第42页 |
| 3.14 动物和手术操作 | 第42-43页 |
| 3.15 显微CT检测 | 第43页 |
| 3.16 生物力学检测 | 第43页 |
| 3.17 统计学分析 | 第43页 |
| 4 结果 | 第43-52页 |
| 4.1 材料表征 | 第43-44页 |
| 4.2 Zn的加载量和释放曲线 | 第44-45页 |
| 4.3 蛋白吸附和细胞粘附 | 第45-46页 |
| 4.4 乳酸脱氢酶活性和细胞增殖 | 第46-47页 |
| 4.5 扫描电镜细胞形态 | 第47页 |
| 4.6 细胞内总蛋白和ALP活性 | 第47-48页 |
| 4.7 细胞外基质矿化 | 第48页 |
| 4.8 成骨相关基因表达 | 第48-49页 |
| 4.9 抗菌实验 | 第49-50页 |
| 4.10 微CT扫描 | 第50-52页 |
| 4.11 力学检测 | 第52页 |
| 5 讨论 | 第52-54页 |
| 6 结论 | 第54-55页 |
| 实验四 锶加载的氧化钛纳米管涂层抑制破骨细胞生成和活性促进骨整合 | 第55-78页 |
| 1 前言 | 第55-56页 |
| 2 材料 | 第56页 |
| 3 方法 | 第56-61页 |
| 3.1 样品制备 | 第56-57页 |
| 3.2 Sr的加载和缓释 | 第57页 |
| 3.3 细胞培养 | 第57页 |
| 3.4 细胞毒性 | 第57-58页 |
| 3.5 样品表面和样品周围破骨细胞形成 | 第58页 |
| 3.6 TRAP活性 | 第58-59页 |
| 3.7 骨吸收实验 | 第59页 |
| 3.8 骨质疏松动物模型制备和内植物植入 | 第59-60页 |
| 3.9 微CT扫描 | 第60页 |
| 3.10 硬组织切片 | 第60-61页 |
| 4 结果 | 第61-74页 |
| 4.1 材料表征 | 第61页 |
| 4.2 Sr的加载和缓释 | 第61-63页 |
| 4.3 细胞培养 | 第63-64页 |
| 4.4 细胞毒性 | 第64-65页 |
| 4.5 样品表面和周围破骨细胞形成 | 第65-68页 |
| 4.6 TRAP活性 | 第68-69页 |
| 4.7 骨吸收率 | 第69-71页 |
| 4.8 骨质疏松动物模型 | 第71页 |
| 4.9 微CT扫描 | 第71-72页 |
| 4.10 组织切片分析 | 第72-74页 |
| 5 讨论 | 第74-77页 |
| 6 结论 | 第77-78页 |
| 综述 | 第78-86页 |
| 摘要 | 第78-79页 |
| 1 TiO_2-NT的制备 | 第79-82页 |
| 1.1 电解液种类和浓度对TiO_2-NT的影响 | 第80页 |
| 1.2 PH值对纳米管的形成的影响 | 第80-81页 |
| 1.3 退火处理的作用 | 第81页 |
| 1.4 TiO_2-NT转变为钛酸盐纳米管 | 第81页 |
| 1.5 活性成分在TiO_2-NT中的填充 | 第81页 |
| 1.6 合金表面纳米管的制备 | 第81-82页 |
| 2 TiO_2-NT在骨科的应用 | 第82-85页 |
| 2.1 TiO_2-NT的抗菌性能 | 第82-83页 |
| 2.2 TiO_2-NT对MSCs的作用 | 第83页 |
| 2.3 TiO_2-NT对成骨细胞的作用 | 第83-84页 |
| 2.4 TiO_2-NT对破骨细胞作用 | 第84页 |
| 2.5 TiO_2-NT对软骨细胞作用 | 第84页 |
| 2.6 TiO_2-NT体内研究 | 第84-85页 |
| 3 展望 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-99页 |
| 附录一 缩略语表 | 第99-102页 |
| 附录二 博士期间发表的论文 | 第102-103页 |
| 致谢 | 第103页 |
