| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7页 |
| 插图和附表清单 | 第11-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-29页 |
| 1.1 滇池金线鲃研究概况 | 第13-16页 |
| 1.2 鱼类天然免疫研究进展 | 第16-19页 |
| 1.3 鱼类抗菌肽研究进展 | 第19-25页 |
| 1.4 肝脏表达的抗菌肽HEPCIDIN和LEAP-2 | 第25-27页 |
| 1.5 本研究的目的及意义 | 第27-29页 |
| 第二章 滇池金线鳃MYD88基因的克隆及序列分析 | 第29-42页 |
| 2.1 材料和方法 | 第29-35页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第29-31页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第31-34页 |
| 2.1.3 MyD88序列生物信息学分析 | 第34-35页 |
| 2.2 结果 | 第35-40页 |
| 2.2.1 总RNA质量检测 | 第35页 |
| 2.2.2 MyD88基因cDNA片段扩增结果 | 第35页 |
| 2.2.3 MyD88基因cDNA序列特征 | 第35-36页 |
| 2.2.4 MyD88与其他动物同源性分析 | 第36-37页 |
| 2.2.5 不同脊椎动物MyD88序列比较 | 第37-38页 |
| 2.2.6 MyD88进化分析 | 第38-40页 |
| 2.3 讨论 | 第40-42页 |
| 第三章 滇池金线鲍Hepcidin基因的克隆及其与LEAP-2的序列分析 | 第42-54页 |
| 3.1 材料和方法 | 第42-44页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第42-43页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第43-44页 |
| 3.1.3 Hepcidin和LEAP-2序列生物信息学分析 | 第44页 |
| 3.2 结果 | 第44-52页 |
| 3.2.1 总RNA质量检测 | 第44页 |
| 3.2.2 Hepcidin基因cDNA片段扩增结果 | 第44-45页 |
| 3.2.3 Hepcidin和LEAP-2基因cDNA序列特征 | 第45页 |
| 3.2.4 滇池金线鲃Hepcidin和LEAP-2前体多肽序列及结构域分析 | 第45-48页 |
| 3.2.5 滇池金线鲃Hepcidin和LEAP-2成熟肽结构分析 | 第48-49页 |
| 3.2.6 Hepcidin和LEAP-2的氨基酸序列比较及进化分析 | 第49-52页 |
| 3.3 讨论 | 第52-54页 |
| 第四章 MYD88、HEPCIDIN和LEAP-2免疫应答分析 | 第54-69页 |
| 4.1 材料和方法 | 第54-59页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第54页 |
| 4.1.2 主要实验试剂 | 第54页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第54-55页 |
| 4.1.4 滇池金线鳃刺激处理与采样 | 第55页 |
| 4.1.5 样品总RNA的提取 | 第55-56页 |
| 4.1.6 荧光定量引物设计 | 第56页 |
| 4.1.7 cDNA合成 | 第56-57页 |
| 4.1.8 qPCR | 第57-59页 |
| 4.1.9 数据分析 | 第59页 |
| 4.2 结果 | 第59-66页 |
| 4.2.1 RNA质量检测 | 第59-60页 |
| 4.2.2 标准曲线的建立 | 第60-63页 |
| 4.2.3 三种刺激后肝脏中MyD88表达变化 | 第63-64页 |
| 4.2.4 三种刺激后肝脏中Hepcidin表达变化 | 第64-65页 |
| 4.2.5 三种刺激后肝脏中LEAP-2表达变化 | 第65-66页 |
| 4.3 讨论 | 第66-69页 |
| 第五章 结论 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-72页 |
| 参考文献 | 第72-84页 |
| 附录A 攻读硕士期间发表论文目录 | 第84页 |
