中文摘要 | 第3-6页 |
英文摘要 | 第6-8页 |
缩略词表 | 第13-15页 |
1 绪论 | 第15-33页 |
1.1 番茄果实成熟研究进展 | 第15-22页 |
1.1.1 乙烯与番茄果实成熟 | 第15-19页 |
1.1.2 色素代谢与果实成熟 | 第19-20页 |
1.1.3 番茄果实突变体与果实成熟 | 第20-22页 |
1.2 组蛋白去乙酰化酶研究进展 | 第22-29页 |
1.2.1 组蛋白乙酰化修饰 | 第22页 |
1.2.2 组蛋白去乙酰化酶基因的功能 | 第22-27页 |
1.2.3 番茄中组蛋白去乙酰化酶基因的研究进展 | 第27-28页 |
1.2.4 展望 | 第28-29页 |
1.3 课题的提出及研究意义 | 第29页 |
1.4 课题的研究内容、技术路线及创新点 | 第29-33页 |
1.4.1 课题的研究内容 | 第29-31页 |
1.4.2 课题的技术路线 | 第31-32页 |
1.4.3 课题的创新点 | 第32-33页 |
2 番茄组蛋白去乙酰化酶基因的筛选与表达分析 | 第33-51页 |
2.1 引言 | 第33页 |
2.2 材料、试剂和仪器 | 第33-34页 |
2.2.1 材料 | 第33页 |
2.2.2 药品与试剂 | 第33页 |
2.2.3 常用仪器设备 | 第33-34页 |
2.3 实验方法 | 第34-40页 |
2.3.1 番茄材料的收集 | 第34-35页 |
2.3.2 番茄SlHDACs基因的生物信息学分析 | 第35-36页 |
2.3.3 总RNA的提取 | 第36-37页 |
2.3.4 cDNA第一链的合成 | 第37页 |
2.3.5 番茄SlHDACs基因的引物设计及评估 | 第37-38页 |
2.3.6 番茄SlHDACs基因的组织表达模式分析 | 第38-39页 |
2.3.7 番茄SlHDACs基因非生物胁迫响应表达分析 | 第39-40页 |
2.4 结果与分析 | 第40-48页 |
2.4.1 番茄SlHDACs基因的分子特征分析 | 第40页 |
2.4.2 番茄SlHDACs蛋白质的分类进化分析 | 第40-42页 |
2.4.3 番茄SlHDACs基因组织表达模式分析 | 第42-45页 |
2.4.4 番茄SlHDA1-SlHDA9基因的非生物胁迫处理表达模式分析 | 第45-48页 |
2.5 讨论 | 第48-50页 |
2.6 本章小结 | 第50-51页 |
3 SlHDA1基因的功能研究 | 第51-95页 |
3.1 引言 | 第51页 |
3.2 材料、试剂和仪器 | 第51-57页 |
3.2.1 材料 | 第51-53页 |
3.2.2 仪器与设备 | 第53页 |
3.2.3 试剂与培养基 | 第53-57页 |
3.3 实验方法 | 第57-71页 |
3.3.1 番茄材料的收集 | 第57页 |
3.3.2 植物基因组DNA的提取 | 第57页 |
3.3.3 总RNA的提取及cDNA的合成 | 第57-58页 |
3.3.4 SlHDA1基因的克隆 | 第58-60页 |
3.3.5 SlHDA1基因RNAi沉默载体的构建 | 第60-63页 |
3.3.6 双元质粒的农杆菌结合转移 | 第63-64页 |
3.3.7 农杆菌LBA4404介导的番茄基因转化 | 第64-65页 |
3.3.8 SlHDA1基因沉默阳性转基因番茄株系的筛选 | 第65-66页 |
3.3.9 SlHDA1基因沉默转基因番茄株系表达水平检测 | 第66页 |
3.3.10 果实总叶绿素及类胡萝卜素的提取 | 第66页 |
3.3.11 乙烯三重检验 | 第66-67页 |
3.3.12 果实乙烯合成量的测定 | 第67页 |
3.3.13 SlHDA1转基因对番茄果实耐贮藏性的影响 | 第67页 |
3.3.14 SlHDA1转基因对成熟相关基因表达的影响 | 第67-69页 |
3.3.15 SlHDA1转基因株系的盐胁迫耐受力分析 | 第69页 |
3.3.16 SlHDA1转基因番茄对ABA敏感性分析 | 第69页 |
3.3.17 SlHDA1转基因株系的干旱胁迫耐受力分析 | 第69-70页 |
3.3.18 SlHDA1转基因株系胁迫处理后各生理指标的测定 | 第70页 |
3.3.19 SlHDA1转基因对胁迫相关基因表达的影响 | 第70-71页 |
3.4 结果与分析 | 第71-88页 |
3.4.1 SlHDA1转基因番茄苗系的培育及筛选 | 第71-74页 |
3.4.2 SlHDA1基因的沉默促进了番茄果实的正常成熟 | 第74页 |
3.4.3 SlHDA1基因的沉默改变了果实色素含量及相关基因的表达 | 第74-76页 |
3.4.4 SlHDA1基因的沉默诱导乙烯的合成及乙烯相关基因的表达 | 第76-79页 |
3.4.5 SlHDA1基因的沉默影响了成熟相关基因的表达 | 第79-80页 |
3.4.6 SlHDA1基因的沉默影响了番茄果实的贮藏 | 第80-81页 |
3.4.7 SlHDA1基因的沉默使得番茄对盐胁迫的抗性降低 | 第81-84页 |
3.4.8 SlHDA1基因的沉默抑制了胁迫相关基因的表达 | 第84-86页 |
3.4.9 SlHDA1基因的沉默使番茄幼苗对ABA的敏感性增加 | 第86-87页 |
3.4.10 SlHDA1基因的沉默使番茄干旱胁迫耐受力降低 | 第87-88页 |
3.5 讨论 | 第88-93页 |
3.5.1 SlHDA1基因在番茄果实成熟中的功能 | 第88-90页 |
3.5.2 SlHDA1基因在非生物胁迫响应中的功能 | 第90-93页 |
3.6 本章小结 | 第93-95页 |
4 SlHDT3基因的功能研究 | 第95-121页 |
4.1 引言 | 第95页 |
4.2 材料、设备与试剂 | 第95页 |
4.2.1 材料 | 第95页 |
4.2.2 仪器与设备 | 第95页 |
4.2.3 试剂与培养基 | 第95页 |
4.3 实验方法 | 第95-102页 |
4.3.1 番茄材料的收集 | 第95页 |
4.3.2 基因组DNA的提取 | 第95-96页 |
4.3.3 总RNA的提取及cDNA的合成 | 第96页 |
4.3.4 SlHD2s亚家族基因的生物信息学分析 | 第96页 |
4.3.5 SlHDT1和SlHDT3基因的引物设计及评估 | 第96页 |
4.3.6 SlHDT1和SlHDT3基因的表达模式分析 | 第96-97页 |
4.3.7 SlHDT1和SlHDT3基因响应非生物胁迫的表达模式分析 | 第97页 |
4.3.8 SlHDT3基因的克隆 | 第97-98页 |
4.3.9 SlHDT3基因沉默载体的构建 | 第98-101页 |
4.3.10 农杆菌LBA4404介导的番茄转基因及阳性转基因株系的筛选 | 第101页 |
4.3.11 沉默转基因株系SlHDT3基因的表达水平检测 | 第101-102页 |
4.3.12 果实总叶绿素及类胡萝卜素的提取 | 第102页 |
4.3.13 果实乙烯合成量的测定 | 第102页 |
4.3.14 SlHDT3转基因对番茄果实耐贮藏性的影响 | 第102页 |
4.3.15 SlHDT3转基因对成熟相关基因表达的影响 | 第102页 |
4.4 结果与分析 | 第102-117页 |
4.4.1 SlHD2s基因的核苷酸及蛋白序列生物信息学分析 | 第102-104页 |
4.4.2 SlHDT1和SlHDT3基因的组织表达模式分析 | 第104-106页 |
4.4.3 SlHDT1和SlHDT3基因的非生物胁迫处理表达模式分析 | 第106-108页 |
4.4.4 SlHDT3转基因苗系的培育及筛选 | 第108-110页 |
4.4.5 SlHDT3基因的沉默延迟了番茄果实的成熟 | 第110-111页 |
4.4.6 SlHDT3基因的沉默改变了果实色素含量及相关基因的表达 | 第111-113页 |
4.4.7 SlHDT3基因的沉默抑制了乙烯的合成及乙烯相关基因的表达 | 第113-114页 |
4.4.8 SlHDT3基因的沉默影响了果实成熟相关基因的表达 | 第114-116页 |
4.4.9 SlHDT3基因的沉默影响了番茄果实的贮藏 | 第116-117页 |
4.5 讨论 | 第117-119页 |
4.6 本章小结 | 第119-121页 |
5 结论与展望 | 第121-125页 |
5.1 主要结论 | 第121-122页 |
5.2 展望 | 第122-125页 |
致谢 | 第125-127页 |
参考文献 | 第127-145页 |
附录 | 第145-146页 |
A. 作者在攻读博士学位期间发表的论文目录 | 第145页 |
B. 作者在攻读博士学位期间发明的专利 | 第145-146页 |
C. 作者在攻读博士学位期间主持和参与的科研项目 | 第146页 |