摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
本文主要英汉缩略语名词对照表 | 第11-13页 |
前言 | 第13-15页 |
第一章 材料与方法 | 第15-20页 |
1.1 材料 | 第15-17页 |
1.1.1 细胞和病毒株 | 第15页 |
1.1.2 主要实验试剂 | 第15-16页 |
1.1.3 主要仪器设备 | 第16页 |
1.1.4 配制主要试剂 | 第16-17页 |
1.2 方法 | 第17-20页 |
1.2.1 小鼠成纤维细胞L929的培养 | 第17页 |
1.2.2 水泡性口炎病毒(VSV)的培养 | 第17-18页 |
1.2.3 病毒空斑试验 | 第18页 |
1.2.4 乐复能和重组小鼠干扰素α1在小鼠L929细胞中的抗病毒活性测定 | 第18-19页 |
1.2.5 统计学分析 | 第19-20页 |
第二章 结果 | 第20-23页 |
2.1 培养小鼠成纤维细胞L929细胞形态观察 | 第20页 |
2.2 VSV使用浓度的确立 | 第20-21页 |
2.3 乐复能和重组小鼠干扰素α1在小鼠L929细胞中的抗病毒活性比较 | 第21-23页 |
2.3.1 乐复能和重组小鼠干扰素α1药物浓度与保护率的测定 | 第21-22页 |
2.3.2 乐复能和重组小鼠干扰素α1在L929-VSV系统中抗病毒活性比较 | 第22-23页 |
第三章 讨论 | 第23-27页 |
3.1 一种来源于人IFN-α的重组高效抗肿瘤抗病毒蛋白——乐复能 | 第23-24页 |
3.2 乐复能对小鼠细胞具有种间交叉生物活性 | 第24-26页 |
3.3 乐复能的抗病毒活性研究 | 第26-27页 |
第四章 结论 | 第27-28页 |
参考文献 | 第28-30页 |
综述 干扰素的研究进展 | 第30-47页 |
参考文献 | 第41-47页 |
致谢 | 第47-48页 |
攻读学位期间主要的研究成果 | 第48页 |