| 中文摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 符号说明 | 第13-15页 |
| 第一章 前言 | 第15-30页 |
| 1.1 盐胁迫下植物的应答 | 第15-17页 |
| 1.1.1 盐胁迫下植物的形态学变化 | 第15-16页 |
| 1.1.2 盐分胁迫下叶片解剖学和超微结构变化 | 第16页 |
| 1.1.3 盐分胁迫下水份运输,气体交换和渗透调节 | 第16页 |
| 1.1.4 光合作用和叶绿素含量 | 第16-17页 |
| 1.2 盐分对植物的胁迫方式 | 第17页 |
| 1.3 植物应对盐胁迫的生理机制 | 第17-24页 |
| 1.3.1 盐分胁迫的感知 | 第17-18页 |
| 1.3.2 离子动态平衡的调节 | 第18-21页 |
| 1.3.3 代谢物和细胞活性对盐胁迫的反应 | 第21-24页 |
| 1.3.3.1 渗透胁迫途径和兼容性溶质的积累 | 第21页 |
| 1.3.3.2 盐胁迫响应相关的ROS信号和抗氧化剂 | 第21-22页 |
| 1.3.3.3 小分子信号 | 第22页 |
| 1.3.3.4 细胞骨架动力学 | 第22页 |
| 1.3.3.5 发育调节 | 第22-23页 |
| 1.3.3.6 表观遗传调控 | 第23-24页 |
| 1.4 GB及相关基因工程研究进展 | 第24-25页 |
| 1.4.1 GB | 第24页 |
| 1.4.2 编码GB合成的基因工程研究进展 | 第24-25页 |
| 1.5 磷酸乙醇胺N-甲基转移酶(PEAMT)及PEAMT基因工程研究进展 | 第25-26页 |
| 1.5.1 PEAMT | 第25-26页 |
| 1.5.2 PEAMT基因工程研究进展 | 第26页 |
| 1.6 液泡膜定位的Na~+/H~+逆向转运蛋白及相关基因工程研究进展 | 第26-27页 |
| 1.6.1 Na~+/H~+逆向转运蛋白 | 第26页 |
| 1.6.2 Na~+/H~+逆向转运蛋白相关基因工程研究进展 | 第26-27页 |
| 1.7 液泡膜定位的H~+-Ppase及相关基因工程研究进展 | 第27-28页 |
| 1.7.1 H~+-Ppase | 第27页 |
| 1.7.2 H~+-Ppase相关基因工程研究进展 | 第27-28页 |
| 1.8 基因聚合提高作物耐逆的研究进展 | 第28页 |
| 1.9 本研究的目的与意义 | 第28-30页 |
| 第二章 材料与方法 | 第30-40页 |
| 2.1 实验材料 | 第30页 |
| 2.2 实验方法 | 第30-40页 |
| 2.2.1 转TsVP-betA-AtNHX1基因棉花的获得 | 第30-31页 |
| 2.2.2 转基因棉花的筛选鉴定 | 第31-35页 |
| 2.2.2.1 转基因棉花的PCR检测 | 第31-32页 |
| 2.2.2.2 转基因棉花株系内目的基因表达分析 | 第32-35页 |
| 2.2.3 转基因棉花的沙培实验 | 第35-38页 |
| 2.2.3.1 可溶性糖含量测定方法 | 第36页 |
| 2.2.3.2 甜菜碱含量测定方法 | 第36页 |
| 2.2.3.3 Na~+、K~+、Ca~(2+)离子含量测定方法 | 第36页 |
| 2.2.3.4 植株干重测定方法 | 第36-37页 |
| 2.2.3.5 光合作用参数测定方法 | 第37页 |
| 2.2.3.6 荧光参数测定方法 | 第37页 |
| 2.2.3.7 RWC测定方法 | 第37页 |
| 2.2.3.8 饱和渗透式测定方法 | 第37页 |
| 2.2.3.9 离子渗漏测定方法 | 第37页 |
| 2.2.3.10 MDA含量测定方法 | 第37页 |
| 2.2.3.11 叶绿素含量测定方法 | 第37-38页 |
| 2.2.3.12 SOD活性测定方法 | 第38页 |
| 2.2.4 转基因棉花的水培实验 | 第38-39页 |
| 2.2.4.1 RWC测定方法 | 第38页 |
| 2.2.4.2 饱和渗透式测定方法 | 第38页 |
| 2.2.4.3 植株干重测定方法 | 第38-39页 |
| 2.2.4.4 光合作用参数测定方法 | 第39页 |
| 2.2.4.5 荧光参数测定方法 | 第39页 |
| 2.2.5 转基因棉花的出苗实验 | 第39页 |
| 2.2.6 转基因棉花的盐碱地大田实验 | 第39页 |
| 2.2.7 数据的统计与分析 | 第39-40页 |
| 第三章 结果与分析 | 第40-67页 |
| 3.1 转基因棉花的分子鉴定结果 | 第40-43页 |
| 3.1.1 AtNHX1、betA、tSVP基因的PCR鉴定结果 | 第40-41页 |
| 3.1.2 AtNHX1、betA、TsVP基因的表达量检测结果 | 第41-43页 |
| 3.1.2.1 AtNHX1、betA、TsVP基因的半定量-PCR检测结果 | 第41页 |
| 3.1.2.2 AtNHX1、betA、TsVP基因的Real-Time PCR检测结果 | 第41-43页 |
| 3.2 转基因棉花盐胁迫沙培实验生理检测结果 | 第43-51页 |
| 3.2.1 盐胁迫处理前后转基因棉花的表型 | 第43页 |
| 3.2.2 棉花干重 | 第43-44页 |
| 3.2.3 相对含水量和饱和渗透势 | 第44-45页 |
| 3.2.4 叶片离子含量 | 第45-47页 |
| 3.2.5 光合作用、叶绿素荧光参数及叶绿素含量 | 第47-48页 |
| 3.2.6 渗透保护物质 | 第48-49页 |
| 3.2.7 叶片膜损伤和SOD酶活性 | 第49-51页 |
| 3.3 转基因棉花盐胁迫水培实验生理检测结果 | 第51-57页 |
| 3.3.1 相对含水量 | 第51-52页 |
| 3.3.2 饱和渗透势 | 第52-53页 |
| 3.3.3 植株干重 | 第53-54页 |
| 3.3.4 净光合速率 | 第54-55页 |
| 3.3.5 叶绿素荧光参数 | 第55-57页 |
| 3.4 沙培条件下转基因棉花盐胁迫出苗实验结果 | 第57-64页 |
| 3.4.1 盐胁迫下各棉花株系出苗状况及出苗率 | 第57-59页 |
| 3.4.2 植株株高 | 第59-61页 |
| 3.4.3 植株表型及干重 | 第61-64页 |
| 3.5 盐碱地大田条件下各棉花株系农艺学性状及生理指标统计结果 | 第64-67页 |
| 3.5.1 盐碱地大田条件下各棉花株系的光合参数和荧光参数 | 第64-65页 |
| 3.5.2 盐碱地大田条件下各株系棉花的籽棉产量 | 第65页 |
| 3.5.3 盐碱地大田下各株系棉花的农艺学性状 | 第65-67页 |
| 第四章 讨论 | 第67-75页 |
| 4.1 共表达AtNHX1-betA-TsVP基因对增强棉花耐盐性的价值 | 第67-72页 |
| 4.1.1 盐处理条件下转基因棉花具备更高出苗率和生物量 | 第67-68页 |
| 4.1.2 盐胁迫条件下转基因棉花具有更高持水能力和光合作用效率 | 第68-70页 |
| 4.1.3 盐胁迫条件下转基因棉花具有更低膜损伤和更高抗氧化酶活 | 第70-71页 |
| 4.1.4 AtNHX1-betA-TsVP基因的过表达有助于维持细胞的离子平衡 | 第71页 |
| 4.1.5 盐碱地大田条件下转基因棉花具有较好地农艺学性状和更高的籽棉产量 | 第71-72页 |
| 4.2 共表达AtNHX1-betA-TsVP基因提高棉花耐盐性的机制 | 第72-74页 |
| 4.3 小结与展望 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-95页 |
| 附录 | 第95-98页 |
| 致谢 | 第98-99页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第99-100页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第100页 |
