| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-30页 |
| 1.1 茶小绿叶蝉研究概况 | 第14-19页 |
| 1.1.1 分布与为害 | 第14-15页 |
| 1.1.2 生物学及行为学习性 | 第15-16页 |
| 1.1.3 人工饲养技术 | 第16页 |
| 1.1.4 无公害防治技术 | 第16-19页 |
| 1.2 温度对昆虫的影响 | 第19-23页 |
| 1.2.1 低温胁迫对昆虫的影响 | 第20-21页 |
| 1.2.2 高温胁迫对昆虫的影响 | 第21-23页 |
| 1.3 保护酶系在昆虫抵御温度胁迫中的作用 | 第23-25页 |
| 1.4 热激蛋白在昆虫抵御温度胁迫中的作用 | 第25-28页 |
| 1.4.1 热激蛋白的发现及分类 | 第25页 |
| 1.4.2 热激蛋白的分子结构特征 | 第25-26页 |
| 1.4.3 热激蛋白基因的表达调控 | 第26页 |
| 1.4.4 热激蛋白的功能 | 第26-28页 |
| 1.5 选题依据、目的及意义 | 第28-30页 |
| 第二章 不同温度下茶小绿叶蝉实验种群生命表研究 | 第30-37页 |
| 2.1 材料与方法 | 第30-31页 |
| 2.1.1 供试虫源 | 第30页 |
| 2.1.2 供试仪器 | 第30页 |
| 2.1.3 温度处理 | 第30-31页 |
| 2.1.4 繁殖力观测 | 第31页 |
| 2.2 分析方法 | 第31页 |
| 2.3 数据处理 | 第31-32页 |
| 2.4 结果与分析 | 第32-35页 |
| 2.4.1 温度对发育历期的影响 | 第32-33页 |
| 2.4.2 发育起点温度与有效积温 | 第33页 |
| 2.4.3 温度对成虫寿命的影响 | 第33-34页 |
| 2.4.4 不同温度处理下的生命表参数比较 | 第34页 |
| 2.4.5 温度对各龄期存活率的影响 | 第34-35页 |
| 2.5 结论与讨论 | 第35-37页 |
| 第三章 短期高低温胁迫对茶小绿叶蝉成虫适应性的影响 | 第37-43页 |
| 3.1 试验材料 | 第37-38页 |
| 3.1.1 主要器材 | 第37页 |
| 3.1.2 试虫 | 第37-38页 |
| 3.2 试验方法 | 第38页 |
| 3.2.1 温度处理后成虫存活率的测定 | 第38页 |
| 3.2.2 短期高低温胁迫对成虫的影响 | 第38页 |
| 3.2.3 数据处理 | 第38页 |
| 3.3 结果与分析 | 第38-41页 |
| 3.3.1 温度处理对成虫存活率的影响 | 第38-39页 |
| 3.3.2 高低温胁迫对成虫寿命的影响 | 第39-41页 |
| 3.3.3 高低温胁迫对成虫产卵量的影响 | 第41页 |
| 3.4 小结与讨论 | 第41-43页 |
| 第四章 茶小绿叶蝉成虫对不同温度的生理生化响应 | 第43-53页 |
| 4.1 试验材料 | 第43-44页 |
| 4.1.1 供试虫源 | 第43-44页 |
| 4.1.2 供试试剂 | 第44页 |
| 4.1.3 供试仪器 | 第44页 |
| 4.2 试验方法 | 第44-48页 |
| 4.2.1 温度处理 | 第44页 |
| 4.2.2 酶液提取及保护酶活性的测定 | 第44-48页 |
| 4.3 数据处理 | 第48页 |
| 4.4 结果与分析 | 第48-52页 |
| 4.4.1 不同温度对SOD和CuZn-SOD的影响 | 第48-49页 |
| 4.4.2 不同温度对POD的影响 | 第49-50页 |
| 4.4.3 不同温度对CAT的影响 | 第50页 |
| 4.4.4 不同温度对T-AOC的影响 | 第50-51页 |
| 4.4.5 不同温度对总蛋白含量的影响 | 第51-52页 |
| 4.5 讨论 | 第52-53页 |
| 第五章 茶小绿叶蝉热激蛋白和内参基因的cDNA克隆及序列分析 | 第53-82页 |
| 5.1 试验材料 | 第53-56页 |
| 5.1.1 主要仪器设备 | 第53-54页 |
| 5.1.2 主要试剂 | 第54-55页 |
| 5.1.3 主要试剂的配制 | 第55-56页 |
| 5.1.4 供试虫源 | 第56页 |
| 5.2 试验方法 | 第56-69页 |
| 5.2.1 简并引物设计 | 第56-57页 |
| 5.2.2 总RNA提取 | 第57页 |
| 5.2.3 总RNA浓度测定 | 第57页 |
| 5.2.4 总RNA质量检测 | 第57-58页 |
| 5.2.5 合成cDNA第一链 | 第58页 |
| 5.2.6 PCR扩增反应及结果检测 | 第58-59页 |
| 5.2.7 PCR产物纯化 | 第59-60页 |
| 5.2.8 产物连接 | 第60页 |
| 5.2.9 连接产物转化 | 第60页 |
| 5.2.10 蓝白斑筛选 | 第60页 |
| 5.2.11 菌液PCR及结果检测 | 第60-61页 |
| 5.2.12 测序 | 第61页 |
| 5.2.13 cDNA3’末端扩增（3’RACE） | 第61-64页 |
| 5.2.14 cDNA 5’末端扩增（5’RACE） | 第64-67页 |
| 5.2.15 Hsp70 和Hsp90 的全长序列验证 | 第67-68页 |
| 5.2.16 序列分析 | 第68-69页 |
| 5.3 结果与分析 | 第69-81页 |
| 5.3.1 总RNA提取 | 第69页 |
| 5.3.2 cDNA片段扩增 | 第69-72页 |
| 5.3.3 基因 3’RACE扩增 | 第72-73页 |
| 5.3.4 基因 5’RACE扩增 | 第73-74页 |
| 5.3.5 基因全长序列验证 | 第74页 |
| 5.3.6 序列分析 | 第74-81页 |
| 5.4 小结与讨论 | 第81-82页 |
| 第六章 高低温胁迫下Eohsp70 和Eohsp90 的mRNA表达 | 第82-97页 |
| 6.1 试验材料 | 第82-84页 |
| 6.1.1 主要器材和试剂 | 第82-83页 |
| 6.1.2 试虫 | 第83-84页 |
| 6.2 试验方法 | 第84-87页 |
| 6.2.1 高低温胁迫处理 | 第84页 |
| 6.2.2 总RNA提取 | 第84页 |
| 6.2.3 去除基因组DNA | 第84-85页 |
| 6.2.4 反转录 | 第85页 |
| 6.2.5 qPCR | 第85-86页 |
| 6.2.6 标准曲线的构建 | 第86-87页 |
| 6.2.7 数据处理 | 第87页 |
| 6.3 结果与分析 | 第87-94页 |
| 6.3.1 定量引物稳定性分析 | 第87页 |
| 6.3.2 定量引物质量检测 | 第87-90页 |
| 6.3.3 不同温度处理下的热激蛋白表达量 | 第90-91页 |
| 6.3.4 41℃不同时间处理下的热激蛋白表达量 | 第91-93页 |
| 6.3.5 0℃不同时间处理下的热激蛋白表达量 | 第93-94页 |
| 6.4 小结与讨论 | 第94-97页 |
| 第七章 结论与创新 | 第97-98页 |
| 7.1 结论 | 第97页 |
| 7.2 本研究的创新点 | 第97页 |
| 7.3 展望 | 第97-98页 |
| 参考文献 | 第98-114页 |
| 致谢 | 第114-115页 |
| 个人简介 | 第115页 |
