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猪细小病毒诱导猪黄体细胞凋亡及抑制孕酮产生机制研究

摘要第6-9页
abstract第9-12页
文献综述第17-27页
    第一章 病毒诱导宿主细胞凋亡研究进展第17-27页
        1.1 病毒感染诱导细胞凋亡第17-19页
            1.1.1 病毒量与细胞凋亡第17-18页
            1.1.2 病毒抗体与细胞凋亡第18-19页
        1.2 病毒感染诱导细胞凋亡的信号转导通路第19-24页
            1.2.1 病毒感染诱导死亡受体通路研究第19页
            1.2.2 病毒感染诱导线粒体通路研究第19-20页
            1.2.3 病毒感染诱导p53信号转导通路研究第20-22页
            1.2.4 病毒感染诱导MAPKs信号转导通路研究第22-24页
        1.3 细小病毒诱导的细胞凋亡第24-25页
        1.4 本研究的目的意义第25-27页
试验研究第27-90页
    第二章 永生化猪黄体细胞系的建立与鉴定第27-46页
        2.1 试验材料第27-29页
            2.1.1 卵巢组织第27页
            2.1.2 实验动物第27页
            2.1.3 质粒和细胞第27页
            2.1.4 主要试剂第27-28页
            2.1.5 主要试剂的配置第28页
            2.1.6 主要仪器第28-29页
        2.2 试验方法第29-37页
            2.2.1 原代猪黄体细胞的分离、纯化第29页
            2.2.2 3β-HSD活性染色和Oil-Red-O染色鉴定第29-30页
            2.2.3 猪黄体细胞的永生化第30页
            2.2.4 转染后的猪黄体细胞端粒酶基因表达及活性鉴定第30-32页
            2.2.5 核型分析第32页
            2.2.6 透射电子显微镜观察第32-33页
            2.2.7 3β-HSD活性染色和Oil-Red-O染色鉴定转染后黄体细胞第33页
            2.2.8 台盼蓝法鉴定细胞活性第33页
            2.2.9 RT-PCR法检测类固醇激素合成相关分子的表达第33-35页
            2.2.10 放射免疫法检测LH和氯前列烯醇刺激后孕酮的产生第35-36页
            2.2.11 Westernblotting法检测LH和氯前列烯醇刺激后孕酮合成过程中关键蛋白和酶的表达第36页
            2.2.12 软琼脂试验及裸鼠致瘤试验第36页
            2.2.13 统计学分析第36-37页
        2.3 结果第37-43页
            2.3.1 永生化猪黄体细胞系的建立第37-39页
            2.3.2 永生化猪黄体细胞形态学特征的鉴定第39页
            2.3.3 类固醇激素合成过程中相关分子的表达第39-41页
            2.3.4 LH和氯前列烯醇对黄体细胞孕酮合成的影响第41-42页
            2.3.5 体内和体外致瘤性分析第42-43页
        2.4 讨论第43-45页
        2.5 小结第45-46页
    第三章 猪细小病毒诱导猪黄体细胞凋亡信号转导通路研究第46-66页
        3.1 试验材料第46-47页
            3.1.1 病毒和细胞第46页
            3.1.2 主要试剂第46-47页
            3.1.3 主要仪器第47页
        3.2 试验方法第47-53页
            3.2.1 PPV的扩增及病毒滴度的测定第47-48页
            3.2.2 MTT法检测PPV对黄体细胞细胞活性的影响第48页
            3.2.3 qPCR法检测PPV在黄体细胞中的增殖第48-50页
            3.2.4 PPV感染对黄体细胞损伤的形态观察第50页
            3.2.5 DNA片段化分析第50页
            3.2.6 流式细胞术检测第50-51页
            3.2.7 分光光度法检测caspase的活性第51页
            3.2.8 抑制剂预处理猪黄体细胞第51页
            3.2.9 Westernblotting法检测死亡受体和线粒体通路主要相关蛋白的表达第51-52页
            3.2.10 RT-PCR法检测p53转录水平的变化第52-53页
            3.2.11 Westernblotting法检测p53蛋白表达和转位以及p38MAPK、JNK总蛋白和蛋白磷酸化水平变化情况第53页
            3.2.12 p53siRNA转染猪黄体细胞第53页
            3.2.13 统计学分析第53页
        3.3 结果第53-63页
            3.3.1 PPV感染对黄体细胞活性的影响第53-54页
            3.3.2 PPV在黄体细胞中的增殖第54页
            3.3.3 PPV感染诱导原代和永生化黄体细胞凋亡第54-56页
            3.3.4 PPV感染经线粒体通路诱导原代和永生化黄体细胞凋亡第56-59页
            3.3.5 p53参与调控PPV诱导的黄体细胞凋亡第59-61页
            3.3.6 PPV诱导黄体细胞中的p38MAPK发生磷酸化第61-63页
            3.3.7 磷酸化p38参与调控PPV感染引起的黄体细胞凋亡第63页
        3.4 讨论第63-65页
        3.5 小结第65-66页
    第四章 猪细小病毒抑制猪黄体细胞孕酮产生机制研究第66-75页
        4.1 试验材料第66页
            4.1.1 病毒和细胞第66页
            4.1.2 主要试剂第66页
        4.2 试验方法第66-69页
            4.2.1 放射免疫法检测孕酮的产生第66-67页
            4.2.2 Real-timePCR法检测黄体细胞中孕酮合成关键蛋白和酶的表达第67-68页
            4.2.3 Westernblotting法检测黄体细胞中孕酮合成关键蛋白和酶的表达第68页
            4.2.4 放射免疫法检测特异性抑制剂预处理后PPV感染对黄体细胞孕酮产生的影响第68-69页
            4.2.5 统计学分析第69页
        4.3 结果第69-73页
            4.3.1 PPV感染抑制原代和永生化黄体细胞孕酮产生第69-70页
            4.3.2 PPV感染对黄体细胞孕酮合成的影响第70-71页
            4.3.3 调控PPV感染诱导黄体细胞凋亡过程的相关因子对黄体细胞孕酮产生的影响第71-73页
        4.4 讨论第73-74页
        4.5 小结第74-75页
    第五章 猪细小病毒感染诱导初孕母猪黄体细胞凋亡及抑制孕酮产生研究第75-90页
        5.1 试验材料第75-77页
            5.1.1 病毒和细胞第75页
            5.1.2 实验动物第75页
            5.1.3 主要试剂第75-76页
            5.1.4 主要试剂的配置第76页
            5.1.5 主要仪器第76-77页
        5.2 试验方法第77-80页
            5.2.1 人工感染PPV第77页
            5.2.2 血清中PPV抗体水平的检测第77页
            5.2.3 血清中孕酮含量的检测第77-78页
            5.2.4 原位杂交法检测PPV在黄体组织中的分布及复制情况的确定第78-79页
            5.2.5 Westernblotting法检测黄体组织中PPV的表达第79页
            5.2.6 HE染色第79页
            5.2.7 TUNEL染色第79-80页
            5.2.8 透射电子显微镜观察黄体组织细胞超微结构变化第80页
            5.2.9 Westernblotting法检测黄体组织中细胞凋亡信号转导通路主要相关蛋白的表达第80页
            5.2.10 Real-timePCR法检测黄体组织中孕酮合成过程中关键蛋白和酶基因的表达第80页
            5.2.11 Westernblotting法检测黄体组织中孕酮合成过程中关键蛋白及酶的表达.第80页
            5.2.12 统计学分析第80页
        5.3 结果第80-88页
            5.3.1 人工感染PPV不同时间妊娠猪血清中PPV抗体水平的变化第80-81页
            5.3.2 人工感染PPV不同时间妊娠猪血清中孕酮水平的变化第81-82页
            5.3.3 人工感染PPV不同时间对初孕猪卵巢大体剖检观察结果第82页
            5.3.4 人工感染PPV后PPV在黄体组织中复制及病毒载量的观察第82-83页
            5.3.5 人工感染PPV不同时间对初孕母猪黄体组织损伤和细胞凋亡的影响第83-84页
            5.3.6 人工感染PPV对初孕母猪黄体组织细胞超微结构的影响第84-85页
            5.3.7 人工感染PPV通过线粒体通路介导黄体组织中细胞凋亡第85-86页
            5.3.8 人工感染PPV促进p53蛋白在黄体组织细胞中的积累第86页
            5.3.9 人工感染PPV诱导黄体组织细胞中p38蛋白发生磷酸化第86-87页
            5.3.10 人工感染PPV不同时间对初孕母猪黄体组织中孕酮合成相关蛋白和酶表达的影响第87-88页
        5.4 讨论第88-89页
        5.5 小结第89-90页
结论第90-91页
创新点第91-92页
参考文献第92-107页
英文缩略词及中英文对照第107-109页
致谢第109-110页
作者简介第110-111页

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