摘要 | 第6-9页 |
Abstract | 第9-12页 |
缩略词表 | 第13-14页 |
1 前言 | 第14-39页 |
1.1 课题的提出 | 第14-18页 |
1.1.1 马铃薯概述 | 第14-15页 |
1.1.2 马铃薯块茎低温糖化机理 | 第15-18页 |
1.2 文献综述 | 第18-38页 |
1.2.1 淀粉降解途径在淀粉-糖代谢过程中的调控作用 | 第18-35页 |
1.2.2 RING finger基因功能研究进展 | 第35-38页 |
1.3 本研究的目的及内容 | 第38-39页 |
2 马铃薯块茎低温糖化相关基因表达分析 | 第39-58页 |
2.1 前言 | 第39-40页 |
2.2 材料与方法 | 第40-43页 |
2.2.1 植物材料 | 第40页 |
2.2.2 薯片色泽级数评定 | 第40页 |
2.2.3 马铃薯块茎生理生化指标测定 | 第40-41页 |
2.2.4 块茎RNA的抽提、纯化及反转录 | 第41-42页 |
2.2.5 半定量RT-PCR和定量qPCR | 第42-43页 |
2.2.6 统计分析 | 第43页 |
2.3 结果与分析 | 第43-56页 |
2.3.1 马铃薯低温糖化相关基因芯片中差异表达基因表达分析 | 第43-49页 |
2.3.2 淀粉降解相关基因与块茎低温糖化及发芽的关系 | 第49-56页 |
2.4 讨论 | 第56-58页 |
2.4.1 低温处理的抗低温糖化基因型块茎中特异表达ESTs的获得 | 第56页 |
2.4.2 淀粉降解途径在块茎低温糖化和发芽过程中的作用 | 第56-58页 |
3 SbAI基因的克隆及功能鉴定 | 第58-101页 |
3.1 前言 | 第58-59页 |
3.2 材料与方法 | 第59-67页 |
3.2.1 实验材料 | 第59-60页 |
3.2.2 实验方法 | 第60-67页 |
3.3 结果与分析 | 第67-97页 |
3.3.1 SbAI基因生物信息学分析及组织特异性表达分析 | 第67-78页 |
3.3.2 SbAI基因在马铃薯块茎低温糖化过程中的作用 | 第78-91页 |
3.3.3 SbAI与淀粉酶互作模式研究 | 第91-97页 |
3.4 讨论 | 第97-101页 |
3.4.1 SbAI是马铃薯中首次报道的淀粉酶抑制子基因 | 第97-98页 |
3.4.2 淀粉酶及淀粉酶抑制子与低温糖化的关系 | 第98-99页 |
3.4.3 SbAI基因研究展望 | 第99-101页 |
4 SbRFP1基因的克隆及功能鉴定 | 第101-128页 |
4.1 前言 | 第101页 |
4.2 材料与方法 | 第101-104页 |
4.2.1 实验材料 | 第101-102页 |
4.2.2 实验方法 | 第102-104页 |
4.3 结果与分析 | 第104-125页 |
4.3.1 SbRFP1基因生物信息学分析 | 第104-111页 |
4.3.2 SbRFP1基因在马铃薯块茎低温糖化过程中的作用 | 第111-125页 |
4.4 讨论 | 第125-128页 |
4.4.1 SbRFP1基因是马铃薯中新的RING finger基因 | 第125页 |
4.4.2 SbRFP1基因在低温糖化过程中的作用 | 第125-126页 |
4.4.3 SbRFP1基因对低温糖化的调控机制 | 第126-127页 |
4.4.4 SbRFP1基因研究展望 | 第127-128页 |
5 总讨论 | 第128-133页 |
5.1 马铃薯低温糖化的调控 | 第128-129页 |
5.2 淀粉降解与低温糖化 | 第129-131页 |
5.3 马铃薯加工品质育种 | 第131-133页 |
参考文献 | 第133-162页 |
附录1:ESTs表达谱分析所用引物信息 | 第162-164页 |
附录2:SbAI基因在GenBank中的登录信息 | 第164-167页 |
附录3:SbRFP1基因在GenBank中的登录信息 | 第167-170页 |
附录4:博士期间发表或参与发表的文章 | 第170-171页 |
致谢 | 第171页 |