| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 缩略语表 | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-22页 |
| 1.1 叶绿素缺失突变体类型 | 第10页 |
| 1.2 叶绿素缺失的相关研究 | 第10-14页 |
| 1.2.1 叶绿素生物合成 | 第10-12页 |
| 1.2.2 叶绿体蛋白合成或输入 | 第12-13页 |
| 1.2.3 血红素反馈抑制 | 第13页 |
| 1.2.4 细胞核、叶绿体信号转导 | 第13-14页 |
| 1.2.5 光氧化平衡 | 第14页 |
| 1.3 叶绿素缺失突变体研究进展 | 第14-16页 |
| 1.3.1 细胞学研究 | 第14-15页 |
| 1.3.2 遗传学研究 | 第15页 |
| 1.3.3 蛋白质组学研究 | 第15-16页 |
| 1.3.4 生理学研究 | 第16页 |
| 1.4 蛋白质组学研究进展 | 第16-20页 |
| 1.4.1 蛋白质组学的概念 | 第16-17页 |
| 1.4.2 蛋白质组学研究方法 | 第17-20页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第20-22页 |
| 第二章 甘蓝型油菜叶绿素缺失突变体的蛋白质组学比较 | 第22-50页 |
| 2.1 材料和试剂 | 第22页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第22页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第22页 |
| 2.1.3 实验设备 | 第22页 |
| 2.1.4 引物合成 | 第22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-30页 |
| 2.2.1 实验流程 | 第22-23页 |
| 2.2.2 蛋白质提取 | 第23-24页 |
| 2.2.3 蛋白质定量 | 第24页 |
| 2.2.4 iTRAQ分析 | 第24-26页 |
| 2.2.5 生物信息学分析 | 第26页 |
| 2.2.6 RNA提取及逆转录合成cDNA | 第26-28页 |
| 2.2.7 实时荧光定量RT-PCR分析 | 第28-30页 |
| 2.3 结果与分析 | 第30-45页 |
| 2.3.1 ITRAQ定量鉴定 | 第30-37页 |
| 2.3.2 生物信息学分析 | 第37-43页 |
| 2.3.3 差异积累蛋白的转录水平表达分析 | 第43-45页 |
| 2.4 讨论 | 第45-50页 |
| 第三章 甘蓝型油菜叶绿素缺失突变体的生理学比较 | 第50-56页 |
| 3.1 材料和试剂 | 第50页 |
| 3.2 实验方法 | 第50-51页 |
| 3.2.1 形态学观察 | 第50页 |
| 3.2.2 色素测定 | 第50页 |
| 3.2.3 叶片气体交换测定 | 第50页 |
| 3.2.4 酶活性测定 | 第50-51页 |
| 3.3 结果与分析 | 第51-54页 |
| 3.3.1 突变体表型 | 第51页 |
| 3.3.2 色素含量 | 第51-52页 |
| 3.3.3 光合速率 | 第52-53页 |
| 3.3.4 酶活性结果 | 第53-54页 |
| 3.4 讨论 | 第54-56页 |
| 全文结论 | 第56-58页 |
| 本研究的创新点 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-70页 |
| 攻读硕士期间发表的文章 | 第70-72页 |
| 致谢 | 第72页 |