摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
1 绪论 | 第12-18页 |
1.1 有机磷农药的概述 | 第12页 |
1.2 OPs的结构 | 第12-13页 |
1.3 OPs引发的食品问题 | 第13-14页 |
1.4 OPs的降解 | 第14页 |
1.5 国内外在该方向的研究现状及分析 | 第14-18页 |
2 有机磷农药降解菌株的选育及鉴定 | 第18-29页 |
2.1 实验材料与仪器 | 第18-19页 |
2.1.1 实验材料 | 第18页 |
2.1.2 主要药品与试剂 | 第18-19页 |
2.1.3 培养基 | 第19页 |
2.1.4 主要仪器与设备 | 第19页 |
2.2 实验方法 | 第19-21页 |
2.2.1 菌株的初筛 | 第19页 |
2.2.2 菌株的复筛 | 第19-20页 |
2.2.3 菌株的鉴定 | 第20-21页 |
2.2.4 菌株对有机磷农药降解的广谱性研究 | 第21页 |
2.3 结果与分析 | 第21-28页 |
2.3.1 菌株的初筛 | 第21页 |
2.3.2 菌株的复筛 | 第21-23页 |
2.3.3 菌株的鉴定 | 第23-28页 |
2.3.4 菌株对有机磷农药降解的广谱性研究 | 第28页 |
2.4 本章小结 | 第28-29页 |
3 发酵培养基与发酵条件的优化 | 第29-42页 |
3.1 实验材料与仪器 | 第29-30页 |
3.1.1 实验材料 | 第29页 |
3.1.2 主要药品与试剂 | 第29-30页 |
3.1.3 培养基 | 第30页 |
3.1.4 主要仪器与设备 | 第30页 |
3.2 实验方法 | 第30-31页 |
3.2.1 生长与降解曲线 | 第30页 |
3.2.2 培养基的优化 | 第30-31页 |
3.2.3 发酵条件的优化 | 第31页 |
3.3 结果与分析 | 第31-41页 |
3.3.1 生长与降解曲线 | 第31页 |
3.3.2 发酵培养基的条件优化 | 第31-40页 |
3.3.3 发酵条件的优化 | 第40-41页 |
3.4 本章小结 | 第41-42页 |
4 有机磷降解酶的提取与纯化 | 第42-52页 |
4.1 实验材料与仪器 | 第42-44页 |
4.1.1 实验菌种 | 第42页 |
4.1.2 主要药品与试剂 | 第42页 |
4.1.3 培养基与试剂 | 第42-43页 |
4.1.4 主要仪器与设备 | 第43-44页 |
4.2 实验方法 | 第44-45页 |
4.2.1 酶学性质的研究 | 第44-45页 |
4.2.2 硫酸铵分级沉淀 | 第45页 |
4.2.3 Sephadex G-75柱层析 | 第45页 |
4.2.4 DEAE Sepharose Fast Flow柱层析 | 第45页 |
4.2.5 SDS-PAGE变性凝胶电泳 | 第45页 |
4.3 结果与分析 | 第45-51页 |
4.3.1 酶学性质的研究 | 第45-48页 |
4.3.2 硫酸铵分级沉淀 | 第48-49页 |
4.3.3 Sephadex G-75柱层析 | 第49-50页 |
4.3.4 DEAE Sepharose Fast Flow柱层析 | 第50页 |
4.3.5 SDS-PAGE变性凝胶电泳 | 第50-51页 |
4.4 本章小结 | 第51-52页 |
5 有机磷降解酶(OPH)基因的研究 | 第52-61页 |
5.1 实验材料与仪器 | 第52-53页 |
5.1.1 实验菌种 | 第52页 |
5.1.2 主要药品与试剂 | 第52页 |
5.1.3 实验材料 | 第52页 |
5.1.4 实验用培养基与溶液 | 第52-53页 |
5.1.5 主要仪器与设备 | 第53页 |
5.2 实验方法 | 第53-55页 |
5.2.1 菌株DOP-Ma3基因组DNA的提取 | 第53页 |
5.2.2 引物的设计 | 第53页 |
5.2.3 OPH基因的PCR扩增 | 第53-54页 |
5.2.4 PCR产物的胶回收 | 第54页 |
5.2.5 PCR产物的测序与分析 | 第54-55页 |
5.3 结果与分析 | 第55-59页 |
5.3.1 OPH基因的PCR扩增 | 第55页 |
5.3.2 PCR产物的测序与分析 | 第55-59页 |
5.4 本章小结 | 第59-61页 |
结论 | 第61-63页 |
参考文献 | 第63-68页 |
附录 | 第68-69页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第69-70页 |
致谢 | 第70页 |