摘要 | 第6-7页 |
Abstract | 第7页 |
英文缩略表 | 第10-11页 |
第一章 引言 | 第11-24页 |
1.1 棉纤维的发育 | 第11-15页 |
1.1.1 纤维原始细胞的分化与突起 | 第11-12页 |
1.1.2 纤维细胞的伸长或初生壁合成 | 第12-13页 |
1.1.3 次生壁的加厚 | 第13-14页 |
1.1.4 脱水成熟 | 第14-15页 |
1.2 四倍体陆地棉纤维突变体研究进展 | 第15-19页 |
1.2.1 光子类突变体 | 第15-17页 |
1.2.2 纤维极端缩短突变体 | 第17-19页 |
1.3 棉花分子标记技术与质量性状的基因定位 | 第19-21页 |
1.3.1 分子标记技术及其在棉花育种的应用 | 第19-20页 |
1.3.2 棉花质量性状的基因定位 | 第20-21页 |
1.4 高分辨率熔解曲线(HRM)技术及其应用 | 第21-22页 |
1.5 本文研究的目的意义 | 第22-24页 |
第二章 徐州142无絮的SSR分子标记定位 | 第24-34页 |
2.1 材料和方法 | 第24-29页 |
2.1.1 亲本材料 | 第24页 |
2.1.2 分离群体构建 | 第24-25页 |
2.1.3 性状调查和遗传分析 | 第25页 |
2.1.4 叶片总DNA提取与检测 | 第25-26页 |
2.1.5 SSR引物PCR与标记分析 | 第26-29页 |
2.1.6 分离比检验 | 第29页 |
2.1.7 图谱构建 | 第29页 |
2.2 结果分析 | 第29-32页 |
2.2.1 F_2群体的绒和絮分离 | 第29-30页 |
2.2.2 绒和絮控制基因的分子定位 | 第30-32页 |
2.3 讨论 | 第32-34页 |
第三章 HRM技术的应用与连锁图谱加密 | 第34-41页 |
3.1 材料与方法 | 第34-36页 |
3.1.1 试验材料 | 第34页 |
3.1.2 试剂和仪器 | 第34页 |
3.1.3 SNP引物的设计 | 第34-35页 |
3.1.4 HRM检测体系和LightCycler 480操作条件改进 | 第35-36页 |
3.1.5 SNP标记的基因分型与图谱加密 | 第36页 |
3.2 结果分析 | 第36-40页 |
3.2.1 HRM的应用与SNP检测 | 第36-37页 |
3.2.2 F_2群体的基因分型和图谱加密 | 第37-38页 |
3.2.3 连锁图谱与物理图谱的比较 | 第38-40页 |
3.3 结论与讨论 | 第40-41页 |
第四章 全文结论 | 第41-42页 |
参考文献 | 第42-49页 |
致谢 | 第49-50页 |
作者简历 | 第50页 |