| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 主要符号对照表 | 第12-13页 |
| 第1章 引言 | 第13-23页 |
| 1.1 组织工程 | 第13-14页 |
| 1.1.1 组织工程的基本原理 | 第13页 |
| 1.1.2 组织工程支架及支架材料 | 第13-14页 |
| 1.2 组织工程支架的制备方法 | 第14-16页 |
| 1.2.1 纤维粘结 | 第14-15页 |
| 1.2.2 溶剂浇筑/粒子沥滤 | 第15页 |
| 1.2.3 相分离/冷冻干燥 | 第15-16页 |
| 1.2.4 气体发泡 | 第16页 |
| 1.2.5 静电纺丝 | 第16页 |
| 1.3 超临界二氧化碳相转化技术制备组织工程支架 | 第16-21页 |
| 1.3.1 致密结构 | 第17-18页 |
| 1.3.2 孔洞结构 | 第18-20页 |
| 1.3.3 三维纳米纤维结构 | 第20-21页 |
| 1.4 本论文的研究思路及主要内容 | 第21-23页 |
| 1.4.1 聚乳酸纳米纤维支架的制备以及制备过程中结构、性能的研究 | 第21页 |
| 1.4.2 聚乳酸纳米纤维支架的生物相容性研究 | 第21-22页 |
| 1.4.3 聚乳酸支架不同拓扑结构与细胞相互作用研究 | 第22页 |
| 1.4.4 体外评价C5.18细胞在聚乳酸组织工程支架上的成软骨分化潜能 | 第22-23页 |
| 第2章 聚乳酸纳米纤维组织工程支架的制备及结构表征 | 第23-43页 |
| 2.1 前言 | 第23-24页 |
| 2.2 材料和仪器 | 第24页 |
| 2.2.1 材料及试剂 | 第24页 |
| 2.2.2 仪器和设备 | 第24页 |
| 2.3 实验方法 | 第24-28页 |
| 2.3.1 左旋聚乳酸支架的制备 | 第24-25页 |
| 2.3.2 Minitab实验设计 | 第25-26页 |
| 2.3.3 聚乳酸支架材料性能的表征 | 第26-28页 |
| 2.4 结果和讨论 | 第28-41页 |
| 2.4.1 Minitab优化聚乳酸复合物配比 | 第28-30页 |
| 2.4.2 相分离工艺参数对支架形貌的影响 | 第30-35页 |
| 2.4.3 聚乳酸支架材料性能的表征 | 第35-41页 |
| 2.5 本章小结 | 第41-43页 |
| 第3章 聚乳酸支架生物相容性研究 | 第43-55页 |
| 3.1 引言 | 第43-44页 |
| 3.2 实验材料和仪器 | 第44-45页 |
| 3.2.1 材料及试剂 | 第44-45页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第45页 |
| 3.3 实验方法 | 第45-49页 |
| 3.3.1 体外细胞毒性实验 | 第45-47页 |
| 3.3.2 急性全身毒性实验 | 第47-48页 |
| 3.3.3 溶血实验 | 第48页 |
| 3.3.5 统计学处理 | 第48-49页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第49-53页 |
| 3.4.1 L929细胞毒性 | 第49-51页 |
| 3.4.2 急性全身毒性实验 | 第51-52页 |
| 3.4.3 溶血实验 | 第52-53页 |
| 3.5 本章小结 | 第53-55页 |
| 第4章 聚乳酸组织工程支架表面拓扑结构与细胞相互作用研究 | 第55-67页 |
| 4.1 引言 | 第55-56页 |
| 4.2 实验材料和仪器 | 第56页 |
| 4.2.1 材料及试剂 | 第56页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第56页 |
| 4.3 实验方法 | 第56-59页 |
| 4.3.1 C5.18软骨细胞的培养 | 第56-57页 |
| 4.3.2 C5.18细胞生长曲线绘制 | 第57页 |
| 4.3.3 支架材料的预处理 | 第57-58页 |
| 4.3.4 蛋白吸附动力学实验 | 第58页 |
| 4.3.5 细胞粘附实验 | 第58-59页 |
| 4.3.6 细胞增殖实验 | 第59页 |
| 4.3.7 细胞分泌蛋白实验 | 第59页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第59-65页 |
| 4.4.1 C5.18细胞的形态学观察 | 第59-60页 |
| 4.4.2 细胞生长曲线 | 第60-61页 |
| 4.4.3 蛋白质吸附性能的评价 | 第61-62页 |
| 4.4.4 细胞粘附实验 | 第62-63页 |
| 4.4.5 细胞增殖实验 | 第63-64页 |
| 4.4.6 细胞分泌蛋白实验 | 第64-65页 |
| 4.5 本章小结 | 第65-67页 |
| 第5章 体外评价C5.18细胞在聚乳酸组织工程支架上的成软骨分化潜能 | 第67-77页 |
| 5.1 引言 | 第67-68页 |
| 5.2 实验材料和仪器 | 第68页 |
| 5.2.1 材料及试剂 | 第68页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第68页 |
| 5.3 实验方法 | 第68-71页 |
| 5.3.1 C5.18成软骨诱导条件考察 | 第68-69页 |
| 5.3.2 细胞分布观察 | 第69页 |
| 5.3.3 碱性磷酸酶检测（ALP） | 第69-70页 |
| 5.3.4 糖胺聚糖检测（GAG） | 第70页 |
| 5.3.5 II型胶原蛋白检测（COI II） | 第70-71页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第71-76页 |
| 5.4.0 RJC 3.1C5.18的成软骨分化诱导 | 第71-73页 |
| 5.4.1 细胞分布观察 | 第73页 |
| 5.4.2 ALP检测 | 第73-74页 |
| 5.4.3 GAG检测 | 第74-75页 |
| 5.4.4 COI II检测 | 第75-76页 |
| 5.5 本章小结 | 第76-77页 |
| 第6章 结论 | 第77-81页 |
| 6.1 实验总结 | 第77-79页 |
| 6.2 后续工作建议 | 第79-81页 |
| 参考文献 | 第81-91页 |
| 致谢 | 第91-93页 |
| 个人简历、在校期间发表学术论文与研究成果 | 第93页 |
