| 致谢 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| 英文摘要 | 第8-10页 |
| 缩略词简表 | 第11-16页 |
| 第一章 绪论 | 第16-32页 |
| 1.1 引言 | 第16-19页 |
| 1.2 姜黄素的研究进展 | 第19-25页 |
| 1.2.1 姜黄素的理化性质 | 第19-20页 |
| 1.2.2 姜黄素的药理活性 | 第20-23页 |
| 1.2.3 姜黄素的药代动力学 | 第23-25页 |
| 1.3 口服药物吸收的概况 | 第25-28页 |
| 1.3.1 口服药物的吸收 | 第26-27页 |
| 1.3.2 影响口服药物吸收的因素 | 第27-28页 |
| 1.4 Caco-2 细胞模型法的概况和研究进展 | 第28-30页 |
| 1.4.1 Caco-2 细胞单层模型研究体外药物吸收的应用 | 第28-29页 |
| 1.4.2 Caco-2 细胞单层模型研究体外药物转运方式的应用 | 第29页 |
| 1.4.3 Caco-2 细胞单层模型研究转运蛋白在药物吸收中的作用 | 第29页 |
| 1.4.4 Caco-2 细胞单层模型研究药物吸收过程中的相互作用 | 第29-30页 |
| 1.4.5 Caco-2 细胞单层模型研究药物剂型和辅料对药物吸收的作用 | 第30页 |
| 1.5 研究目的及意义 | 第30-32页 |
| 第二章 姜黄素及其类似物HPLC分析方法的建立 | 第32-45页 |
| 2.1 实验材料 | 第32页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第32页 |
| 2.1.2 主要材料 | 第32页 |
| 2.2 实验方法 | 第32-34页 |
| 2.2.1 液相条件 | 第32页 |
| 2.2.2 标准溶液的配制 | 第32-33页 |
| 2.2.3 样品处理 | 第33页 |
| 2.2.4 Cur、CB和FE在HBSS中的稳定性考察 | 第33页 |
| 2.2.5 系统适用性分析 | 第33页 |
| 2.2.6 线性相关性分析 | 第33-34页 |
| 2.2.7 精密度分析 | 第34页 |
| 2.2.8 准确度分析 | 第34页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第34-43页 |
| 2.3.1 Cur、CB和FE的液相色谱图 | 第34-37页 |
| 2.3.2 Cur、CB和FE在HBSS中的稳定性考察 | 第37-38页 |
| 2.3.3 系统适应性分析 | 第38-39页 |
| 2.3.4 线性相关性分析 | 第39-41页 |
| 2.3.5 精密度分析 | 第41-42页 |
| 2.3.6 准确度分析 | 第42-43页 |
| 本章小结 | 第43-45页 |
| 第三章 Caco-2 细胞的培养及药物毒性考察 | 第45-50页 |
| 3.1 实验材料 | 第45页 |
| 3.1.1 细胞系 | 第45页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第45页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第45页 |
| 3.2 实验方法 | 第45-48页 |
| 3.2.1 细胞的复苏 | 第45-46页 |
| 3.2.2 细胞的培养及传代 | 第46页 |
| 3.2.3 Cur、CB和FE对Caco-2 细胞毒性的考察 | 第46-48页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第48-49页 |
| 本章小结 | 第49-50页 |
| 第四章 Caco-2 细胞对Cur、CB和FE的摄取情况研究 | 第50-59页 |
| 4.1 实验材料 | 第50页 |
| 4.1.1 细胞系 | 第50页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第50页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第50页 |
| 4.2 实验方法 | 第50-53页 |
| 4.2.1 样品的配制 | 第50-51页 |
| 4.2.2 Caco-2 细胞的培养 | 第51页 |
| 4.2.3 细胞对药物的摄取 | 第51-52页 |
| 4.2.4 药物定量分析 | 第52页 |
| 4.2.5 蛋白含量的测定 | 第52-53页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第53-58页 |
| 4.3.1 蛋白含量标曲的测定 | 第53页 |
| 4.3.2 药物的摄取动力学考察 | 第53-56页 |
| 4.3.3 浓度对摄取的影响 | 第56-58页 |
| 本章小结 | 第58-59页 |
| 第五章 Caco-2 细胞模型的建立及评价 | 第59-65页 |
| 5.1 实验材料 | 第59-60页 |
| 5.1.1 细胞系 | 第59页 |
| 5.1.2 主要仪器 | 第59页 |
| 5.1.3 主要试剂 | 第59-60页 |
| 5.2 实验方法 | 第60-63页 |
| 5.2.1 细胞单层模型的建立 | 第60页 |
| 5.2.2 Caco-2 单层细胞模型的评价 | 第60-63页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第63-64页 |
| 5.3.1 细胞单层的完整性评价 | 第63页 |
| 5.3.2 荧光黄跨膜转运实验 | 第63-64页 |
| 本章小结 | 第64-65页 |
| 第六章 Cur、CB和FE各自在Caco-2细胞模型中的转运研究 | 第65-77页 |
| 6.1 实验材料 | 第65页 |
| 6.1.1 细胞系 | 第65页 |
| 6.1.2 主要仪器 | 第65页 |
| 6.1.3 主要试剂 | 第65页 |
| 6.2 实验方法 | 第65-67页 |
| 6.2.1 样品的配制 | 第65-66页 |
| 6.2.2 细胞单层模型的建立 | 第66页 |
| 6.2.3 药物在Caco-2模型中的双向转运实验 | 第66-67页 |
| 6.2.4 P_(app)值及ER值的计算 | 第67页 |
| 6.2.5 统计学方法 | 第67页 |
| 6.3 结果 | 第67-74页 |
| 6.3.1 时间对Cur、CB和FE在Caco-2单层模型中转运的影响 | 第67-72页 |
| 6.3.2 浓度对CB和FE在Caco-2单层模型中转运的影响 | 第72-74页 |
| 6.4 讨论 | 第74-75页 |
| 本章小结 | 第75-77页 |
| 总结与展望 | 第77-80页 |
| 参考文献 | 第80-90页 |
| 硕士期间发表的论文和专利 | 第90页 |
