| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4-5页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-23页 |
| 1.1 海藻与海藻酸钠概述 | 第10-13页 |
| 1.1.1 海藻种类与成分 | 第10-11页 |
| 1.1.2 海藻纤维成分及结构 | 第11页 |
| 1.1.3 海藻酸钠理化性质 | 第11-12页 |
| 1.1.4 海藻酸钠的应用 | 第12-13页 |
| 1.2 海藻酸钠提取方法概述 | 第13-14页 |
| 1.2.1 酸凝--酸化法 | 第13页 |
| 1.2.2 钙凝--酸化法 | 第13页 |
| 1.2.3 钙凝—离子交换法 | 第13页 |
| 1.2.4 超滤法 | 第13-14页 |
| 1.2.5 酶解法 | 第14页 |
| 1.3 复合酶制备及其固定化方法 | 第14-17页 |
| 1.3.1 影响复合酶活力及稳定性的因素 | 第15-16页 |
| 1.3.2 复合酶固定化方法 | 第16页 |
| 1.3.3 交联酶聚集体性质及制备方法 | 第16-17页 |
| 1.4 海藻酸钠纺丝方法 | 第17-20页 |
| 1.4.1 湿法纺丝制备海藻纤维 | 第17-18页 |
| 1.4.2 静电纺丝制备海藻纤维 | 第18-20页 |
| 1.5 电气石复合纤维研究 | 第20-22页 |
| 1.5.1 空气负离子概述 | 第20页 |
| 1.5.2 电气石结构及释放负离子机理 | 第20-21页 |
| 1.5.3 电气石制备功能材料现状 | 第21-22页 |
| 1.6 本文研究内容 | 第22-23页 |
| 第二章 海藻降解菌分离筛选与鉴定 | 第23-39页 |
| 2.1 引言 | 第23页 |
| 2.2 实验部分 | 第23-26页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第23-25页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第25页 |
| 2.2.3 菌种培养基及相关试剂配制 | 第25-26页 |
| 2.3 海藻降解菌筛选分离筛选方法 | 第26-28页 |
| 2.3.1 菌种初筛 | 第26页 |
| 2.3.2 菌种驯化培养 | 第26-27页 |
| 2.3.3 酶液提取及纯化 | 第27页 |
| 2.3.4 酶活力测定 | 第27-28页 |
| 2.3.5 目标菌种分离培养 | 第28页 |
| 2.4 菌种分子生物学鉴定 | 第28-30页 |
| 2.4.1 菌种 16S rDNA扩增与测序 | 第28-29页 |
| 2.4.1.1 聚合酶链式反应 | 第28-29页 |
| 2.4.1.2 扩增产物电泳与纯化 | 第29页 |
| 2.4.1.3 PCR产物序列测定 | 第29页 |
| 2.4.2 菌株菌落形态特征分析 | 第29页 |
| 2.4.3 生理生化指标 | 第29-30页 |
| 2.5 海藻降解菌筛选结果 | 第30-32页 |
| 2.5.1 菌种酶活力测定 | 第30页 |
| 2.5.2 菌落及菌株形态特征 | 第30-32页 |
| 2.6 菌种分子生物学鉴定 | 第32-38页 |
| 2.6.1 菌种 16S rDNA PCR扩增与纯化 | 第32页 |
| 2.6.2 PCR产物的序列测定及种属确定 | 第32-38页 |
| 2.6.3 菌种生理生化鉴定 | 第38页 |
| 2.7 本章小结 | 第38-39页 |
| 第三章 海藻降解菌的产酶培养与优化 | 第39-56页 |
| 3.1 引言 | 第39页 |
| 3.2 实验部分 | 第39-41页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第39-40页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第40页 |
| 3.2.3 培养基配制 | 第40页 |
| 3.2.4 种子液培养制备 | 第40页 |
| 3.2.5 培养基组成单因素优化 | 第40-41页 |
| 3.2.6 Plackett-Burman实验设计法优化产酶工艺 | 第41页 |
| 3.2.7 酶液制备 | 第41页 |
| 3.3 培养基组成优化结果 | 第41-45页 |
| 3.3.1 碳源优化结果 | 第41-42页 |
| 3.3.2 氮源优化结果 | 第42-43页 |
| 3.3.3 碳氮比优化结果 | 第43-44页 |
| 3.3.4 初始pH优化结果 | 第44-45页 |
| 3.4 PLACKETT-BURMAN实验设计结果 | 第45-55页 |
| 3.4.1 产酶培养主要影响因素研究 | 第45-48页 |
| 3.4.2 最陡爬坡法确定各因素水平 | 第48-49页 |
| 3.4.3 响应面分析法优化培养条件 | 第49-54页 |
| 3.4.4 模型验证性试验 | 第54-55页 |
| 3.5 本章小结 | 第55-56页 |
| 第四章 固定化复合酶制备及酶法提取海藻酸钠 | 第56-75页 |
| 4.1 引言 | 第56-57页 |
| 4.2 实验部分 | 第57-60页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第57-58页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第58页 |
| 4.2.3 主要试剂 | 第58页 |
| 4.2.4 测试方法 | 第58-59页 |
| 4.2.5 固定化复合酶制备 | 第59页 |
| 4.2.6 海藻酸钠复合酶法提取 | 第59-60页 |
| 4.3 复合酶交联酶聚集体制备的影响因素 | 第60-64页 |
| 4.3.1 复合酶配比对溶液粘度的影响 | 第60-61页 |
| 4.3.2 沉淀剂种类对酶活回收率的影响 | 第61页 |
| 4.3.3 交联剂浓度对酶活回收率的影响 | 第61-62页 |
| 4.3.4 交联温度对酶活回收率的影响 | 第62-63页 |
| 4.3.5 交联时间对酶活回收率的影响 | 第63页 |
| 4.3.6 稳定剂对褐藻胶粘度的影响 | 第63-64页 |
| 4.4 复合酶交联酶聚集体的酶学性质 | 第64-70页 |
| 4.4.1 CLEAs的微观形态表征 | 第64页 |
| 4.4.2 最适催化温度及其热稳定性 | 第64-66页 |
| 4.4.3 最适pH值及其酸碱稳定性 | 第66-68页 |
| 4.4.4 CLEAs对金属离子的稳定性 | 第68-69页 |
| 4.4.5 储存时间对CLEAs酶活的影响 | 第69-70页 |
| 4.5 复合酶法提取海藻酸钠的酶促反应动力学 | 第70-73页 |
| 4.5.1 温度对褐藻胶粘度和提取率的影响 | 第70-71页 |
| 4.5.2 pH对褐藻胶粘度和提取率的影响 | 第71页 |
| 4.5.3 CLEAs酶促反应动力学 | 第71-73页 |
| 4.5.4 不同海藻酸钠提取方法对比分析 | 第73页 |
| 4.6 本章小结 | 第73-75页 |
| 第五章 功能海藻纤维静电纺丝性能研究 | 第75-89页 |
| 5.1 引言 | 第75页 |
| 5.2 实验部分 | 第75-78页 |
| 5.2.1 材料与试剂 | 第75-76页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第76页 |
| 5.2.3 SA/PVA纺丝液配比对纤维形貌的影响 | 第76-77页 |
| 5.2.4 TUR添加量对纤维形貌的影响 | 第77页 |
| 5.2.5 功能海藻纤维性能表征方法 | 第77-78页 |
| 5.2.5.1 扫描电镜微观形貌 | 第77-78页 |
| 5.2.5.2 空气负离子（NAI）释放性能检测 | 第78页 |
| 5.2.5.3 红外光谱分析 | 第78页 |
| 5.2.5.4 热性能分析 | 第78页 |
| 5.3 功能海藻纤维静电纺丝影响因素分析 | 第78-85页 |
| 5.3.1 SA/PVA体积比对电纺液性能的影响 | 第78页 |
| 5.3.2 纺丝液配比对纤维微观形貌的影响 | 第78-80页 |
| 5.3.3 TUR添加量对纤维微观形貌的影响 | 第80-81页 |
| 5.3.4 TUR添加量对纤维直径的影响 | 第81-83页 |
| 5.3.5 TUR添加量对纤维NAI释放浓度的影响 | 第83-84页 |
| 5.3.6 功能海藻纤维释放NAI机制 | 第84-85页 |
| 5.4 静电纺功能海藻纤维性能 | 第85-87页 |
| 5.4.1 红外光谱分析（FTIR） | 第85-86页 |
| 5.4.2 热重分析（TG） | 第86-87页 |
| 5.4.3 差示扫描量热分析（DSC） | 第87页 |
| 5.5 本章小结 | 第87-89页 |
| 主要结论与展望 | 第89-91页 |
| 主要结论 | 第89-90页 |
| 展望 | 第90-91页 |
| 论文主要创新点 | 第91-92页 |
| 致谢 | 第92-93页 |
| 参考文献 | 第93-100页 |
| 作者在攻读博士学位期间发表的论文 | 第100页 |
