| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-46页 |
| 1.1 超分子化学概述 | 第13-14页 |
| 1.2 分子识别的发展 | 第14-21页 |
| 1.3 分子识别的主要类型 | 第21-32页 |
| 1.3.1 比色传感器 | 第22-25页 |
| 1.3.2 荧光传感器 | 第25-31页 |
| 1.3.3 电化学传感器 | 第31-32页 |
| 1.4 卟啉的生物活性 | 第32-37页 |
| 1.4.1 卟啉与DNA的相互作用 | 第32-34页 |
| 1.4.2 卟啉在医学研究中的作用 | 第34-37页 |
| 1.5 本文的设计思想 | 第37-38页 |
| 1.5.1 几种分子传感器的设计合成及识别性质研究 | 第37-38页 |
| 1.5.2 阳离子卟啉衍生物与DNA的相互作用及其生物活性 | 第38页 |
| 1.6 参考文献 | 第38-46页 |
| 第二章 click反应杂大环受体的合成及其对金属离子的识别研究 | 第46-65页 |
| 2.1 引言 | 第46-48页 |
| 2.2 实验部分 | 第48-58页 |
| 2.2.1 仪器与试剂 | 第48页 |
| 2.2.2 合成路线 | 第48-50页 |
| 2.2.3 合成步骤 | 第50-53页 |
| 2.2.3.1 N,N-二丙炔基苯胺(1)的制备 | 第50页 |
| 2.2.3.2 4-(4-硝基苯基偶氮)-N,N-二丙炔基苯胺(2)的制备 | 第50-51页 |
| 2.2.3.3 1-叠氮基-2-(2-叠氮乙氧基)乙烷(3a)的合成 | 第51页 |
| 2.2.3.4 1,2-二-(叠氮乙氧基)乙烷(3b)的合成 | 第51-52页 |
| 2.2.3.5 2,6-二叠氮甲基吡啶(3c)的合成 | 第52页 |
| 2.2.3.6 化合物Ⅱ-a的制备 | 第52页 |
| 2.2.3.7 化合物Ⅱ-b的制备 | 第52-53页 |
| 2.2.3.8 化合物Ⅱ-c的制备 | 第53页 |
| 2.2.4 阳离子识别实验 | 第53-58页 |
| 2.2.4.1 紫外可见光谱 | 第53-55页 |
| 2.2.4.2 紫外吸收光谱滴定 | 第55-56页 |
| 2.2.4.3 核磁滴定 | 第56-57页 |
| 2.2.4.4 干扰性测定 | 第57-58页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第58-62页 |
| 2.3.1 合成 | 第58-59页 |
| 2.3.2 图谱解析 | 第59-62页 |
| 2.3.2.1 ~1H NMR谱 | 第59-60页 |
| 2.3.2.2 高分辨质谱 | 第60-62页 |
| 2.4 本章小结 | 第62页 |
| 2.5 参考文献 | 第62-65页 |
| 第三章 以喹啉为荧光团环己二胺为骨架的Zn~(2+)配体的合成及识别研究 | 第65-91页 |
| 3.1 引言 | 第65-66页 |
| 3.2 实验部分 | 第66-84页 |
| 3.2.1 仪器与试剂 | 第66页 |
| 3.2.2 合成路线 | 第66-67页 |
| 3.2.3 合成步骤 | 第67-68页 |
| 3.2.3.1 环己二胺的拆分 | 第67页 |
| 3.2.3.2 8-溴乙酰胺基喹啉的合成 | 第67-68页 |
| 3.2.3.3 目标化合物ACAQ的合成 | 第68页 |
| 3.2.4 阳离子识别实验 | 第68-84页 |
| 3.2.4.1 紫外-可见光谱 | 第68-70页 |
| 3.2.4.2 荧光光谱 | 第70-71页 |
| 3.2.4.3 与各种金属离子的相互作用 | 第71-73页 |
| 3.2.4.4 核磁滴定 | 第73-75页 |
| 3.2.4.5 络合方式的确定 | 第75页 |
| 3.2.4.6 干扰性测定 | 第75-79页 |
| 3.2.4.7 逻辑门与分子开关实验 | 第79-82页 |
| 3.2.4.8 细胞成像 | 第82-84页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第84-86页 |
| 3.3.1 合成 | 第84页 |
| 3.3.2 图谱解析 | 第84-86页 |
| 3.3.2.1 ~1H NMR谱 | 第84-85页 |
| 3.3.2.2 ~(13)C NMR谱 | 第85页 |
| 3.3.2.3 高分辨质谱 | 第85-86页 |
| 3.4 本章小结 | 第86页 |
| 3.5 参考文献 | 第86-91页 |
| 第四章 以胆酸为骨架的氨基酸受体的合成 | 第91-111页 |
| 4.1 引言 | 第91页 |
| 4.2 实验部分 | 第91-107页 |
| 4.2.1 仪器与试剂 | 第91-92页 |
| 4.2.2 合成路线 | 第92-95页 |
| 4.2.3 合成步骤 | 第95-100页 |
| 4.2.3.1 胆酸甲酯A的合成 | 第95-96页 |
| 4.2.3.2 叠氮取代胆酸甲酯B的合成 | 第96页 |
| 4.2.3.3 胆酸中间体C的合成 | 第96页 |
| 4.2.3.4 叠氮取代胆酸-脯氨醇受体D的合成 | 第96-97页 |
| 4.2.3.5 氨基取代胆酸-脯氨醇受体E的合成 | 第97页 |
| 4.2.3.6 胆酸-脯氨醇受体Ⅳ-1的合成 | 第97-98页 |
| 4.2.3.7 氨基酸中间体的合成 | 第98-99页 |
| 4.2.3.8 胆酸-苯丙氨酸受体Ⅳ-2的合成 | 第99-100页 |
| 4.2.4 受体Ⅳ-1与氨基酸的相互作用 | 第100-107页 |
| 4.2.4.1 受体Ⅳ-1与天门冬氨酸的作用 | 第101-103页 |
| 4.2.4.2 受体Ⅳ-1与谷氨酸的作用 | 第103-105页 |
| 4.2.4.3 受体Ⅳ-1与丝氨酸的作用 | 第105-107页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第107-109页 |
| 4.3.1 合成 | 第107页 |
| 4.3.2 图谱解析 | 第107-109页 |
| 4.3.3 受体Ⅳ-1对氨基酸的识别性质 | 第109页 |
| 4.4 本章小结 | 第109页 |
| 4.5 参考文献 | 第109-111页 |
| 第五章 卟啉-磷(膦)酸酯衍生物的合成及其生物活性研究 | 第111-136页 |
| 5.1 引言 | 第111页 |
| 5.2 实验部分 | 第111-126页 |
| 5.2.1 仪器与试剂 | 第111-112页 |
| 5.2.2 合成路线 | 第112-115页 |
| 5.2.3 合成步骤 | 第115-118页 |
| 5.2.3.1 卟啉的制备 | 第115-116页 |
| 5.2.3.2 卟啉的水解 | 第116页 |
| 5.2.3.3 氯代磷酸二乙酯8的合成 | 第116页 |
| 5.2.3.4 溴丙基磷酸二甲酯9的合成 | 第116-117页 |
| 5.2.3.5 膦酸酯键联卟啉10,11的合成 | 第117页 |
| 5.2.3.6 阳离子卟啉12,13的制备 | 第117-118页 |
| 5.2.3.7 对比阳离子卟啉14,15的制备 | 第118页 |
| 5.2.4 生物测试 | 第118-126页 |
| 5.2.4.1 紫外可见光谱与荧光发射光谱 | 第118-122页 |
| 5.2.4.2 MTT法细胞毒性测试 | 第122-125页 |
| 5.2.4.3 共聚焦激光扫描荧光显微镜 | 第125-126页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第126-133页 |
| 5.3.1 合成 | 第126-127页 |
| 5.3.2 生物活性 | 第127页 |
| 5.3.3 图谱解析 | 第127-133页 |
| 5.3.3.1 ~1H NMR谱 | 第127-129页 |
| 5.3.3.3 ~(31)P NMR谱 | 第129-130页 |
| 5.3.3.4 HRMS高分辨质谱 | 第130-133页 |
| 5.4 本章小结 | 第133-134页 |
| 5.5 参考文献 | 第134-136页 |
| 全文总结 | 第136-137页 |
| 附录 | 第137-150页 |
| 附1. 部分化合物的~1H NMR图谱 | 第137-143页 |
| 附2. 部分化合物的~(13)C NMR图谱 | 第143-145页 |
| 附3. 部分化合物的~(31)P NMR谱 | 第145-147页 |
| 附4. 部分化合物的HRMS谱 | 第147-150页 |
| 作者攻读博士学位期间发表的论文(含会议论文) | 第150-151页 |
| 致谢 | 第151页 |
