| 摘要 | 第9-12页 |
| Abstract | 第12-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-39页 |
| 1 抑制素基因免疫研究进展 | 第16-27页 |
| 1.1 抑制素常规免疫 | 第16-17页 |
| 1.1.1 天然抑制素免疫 | 第16页 |
| 1.1.2 化学合成抑制素片段免疫 | 第16-17页 |
| 1.1.3 重组抑制素免疫 | 第17页 |
| 1.2 抑制素基因免疫 | 第17-24页 |
| 1.2.1 抑制素基因免疫的原理和优势 | 第17-18页 |
| 1.2.2 抑制素基因疫苗的研究进展 | 第18-24页 |
| 1.3 抑制素基因疫苗的安全性 | 第24-27页 |
| 1.3.1 基因整合 | 第24-25页 |
| 1.3.2 自身免疫性疾病 | 第25-26页 |
| 1.3.3 基因毒性和生殖毒性 | 第26-27页 |
| 2 水牛同期发情研究进展 | 第27-38页 |
| 2.1 水牛发情周期的生理学特性 | 第28-29页 |
| 2.2 同期发情技术在水牛上的应用 | 第29-38页 |
| 2.2.1 Ovsynch方案 | 第29-31页 |
| 2.2.2 Presych-Ovsynch和Double-Ovsynch方案 | 第31-33页 |
| 2.2.3 CIDR-Ovsynch方案 | 第33-34页 |
| 2.2.4 CIDR与PMSG/eCG联合方案 | 第34-36页 |
| 2.2.5 E2与其他激素的联合方案 | 第36-38页 |
| 3 研究的目的与意义 | 第38-39页 |
| 第二章 抑制素基因疫苗肌肉注射的剂量对杂交水牛卵泡发育和发情排卵及受胎的影响 | 第39-52页 |
| 引言 | 第39-40页 |
| 1 材料与方法 | 第40-44页 |
| 1.1 材料 | 第40-41页 |
| 1.1.1 菌苗和主要试剂 | 第40-41页 |
| 1.1.2 主要仪器设备 | 第41页 |
| 1.1.3 ELISA相关溶液的配制 | 第41页 |
| 1.2 方法 | 第41-44页 |
| 1.2.1 疫苗制备 | 第41页 |
| 1.2.2 动物免疫 | 第41-42页 |
| 1.2.3 血样采集 | 第42页 |
| 1.2.4 同期发情方案与B超检查 | 第42-43页 |
| 1.2.5 血清中抗抑制素IgG抗体水平的检测 | 第43-44页 |
| 1.3 统计分析 | 第44页 |
| 2 结果 | 第44-48页 |
| 2.1 各免疫剂量组的抗抑制素IgG抗体水平 | 第44-45页 |
| 2.2 各免疫剂量组杂交水牛的发情、排卵及受胎率 | 第45-46页 |
| 2.3 各免疫剂量组杂交水牛的大卵泡数量和直径 | 第46页 |
| 2.4 各免疫剂量组杂交水牛的排卵反应 | 第46-48页 |
| 2.5 各免疫剂量组优势卵泡直径的生长速度 | 第48页 |
| 3 讨论 | 第48-51页 |
| 4 结论 | 第51-52页 |
| 第三章 抑制素基因疫苗鼻饲免疫的天数对杂交水牛卵泡发育和发情排卵及受胎的影响 | 第52-63页 |
| 引言 | 第52-53页 |
| 1 材料和方法 | 第53-57页 |
| 1.1 材料 | 第53-54页 |
| 1.1.1 质粒和菌株 | 第53-54页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第54页 |
| 1.1.3 ELISA相关溶液的配制 | 第54页 |
| 1.2 方法 | 第54-57页 |
| 1.2.1 疫苗制备 | 第54页 |
| 1.2.2 试验动物和免疫方案 | 第54-55页 |
| 1.2.3 血液采集 | 第55页 |
| 1.2.4 同期发情 | 第55页 |
| 1.2.5 B超检查 | 第55-56页 |
| 1.2.6 抗抑制素IgG抗体水平的检测 | 第56-57页 |
| 1.3 统计分析 | 第57页 |
| 2 结果 | 第57-61页 |
| 2.1 各免疫天数组的抗抑制素IgG抗体水平 | 第57-58页 |
| 2.2 各免疫天数组杂交水牛发情，排卵和受胎的比例 | 第58-59页 |
| 2.3 各免疫天数组的大卵泡的数量和直径及排卵反应 | 第59-60页 |
| 2.4 各免疫天数组优势卵泡直径的生长速度 | 第60-61页 |
| 3 讨论 | 第61-62页 |
| 4 结论 | 第62-63页 |
| 第四章 抑制素基因疫苗两种免疫途径对杂交水牛在非繁殖季节的卵泡发育和发情排卵及受胎的影响 | 第63-75页 |
| 引言 | 第63-65页 |
| 1 材料与方法 | 第65-67页 |
| 1.1 材料 | 第65页 |
| 1.1.1 菌苗和主要试剂 | 第65页 |
| 1.1.2 ELISA相关溶液的配制 | 第65页 |
| 1.2 方法 | 第65-67页 |
| 1.2.1 疫苗制备 | 第65-66页 |
| 1.2.2 动物免疫 | 第66页 |
| 1.2.3 血样采集 | 第66页 |
| 1.2.4 同期发情方案与B超检查 | 第66-67页 |
| 1.2.5 抗抑制素IgG抗体水平的检测 | 第67页 |
| 1.3 统计分析 | 第67页 |
| 2 结果 | 第67-72页 |
| 2.1 不同途径免疫的抗抑制素IgG抗体水平 | 第67-68页 |
| 2.2 不同途径免疫杂交水牛的发情、排卵及受胎比例 | 第68-69页 |
| 2.3 不同途径免疫杂交水牛的大卵泡数量和直径 | 第69-70页 |
| 2.4 不同途径免疫杂交水牛的排卵反应 | 第70-71页 |
| 2.5 繁殖季节与非繁殖季节杂交水牛的繁殖性状 | 第71-72页 |
| 3 讨论 | 第72-74页 |
| 4 结论 | 第74-75页 |
| 第五章 抑制素基因疫苗的生物安全性评价 | 第75-82页 |
| 引言 | 第75-76页 |
| 1 材料与方法 | 第76-77页 |
| 1.1 材料 | 第76页 |
| 1.2 方法 | 第76-77页 |
| 1.2.1 疫苗制备 | 第76页 |
| 1.2.2 动物免疫 | 第76-77页 |
| 1.2.3 牛临床反应的检测 | 第77页 |
| 1.2.4 环境采样与细菌鉴定 | 第77页 |
| 1.3 统计分析 | 第77页 |
| 2 结果 | 第77-80页 |
| 2.1 免疫后杂交水牛临床反应的检测 | 第77-78页 |
| 2.2 疫苗菌株在外界环境中的存活情况检测 | 第78-80页 |
| 3 讨论 | 第80-81页 |
| 4 结论 | 第81-82页 |
| 全文总结 | 第82-83页 |
| 创新与不足 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-104页 |
| 发表的论文 | 第104-105页 |
| 致谢 | 第105-106页 |
