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菊粉酶的筛选、异源表达及固定化

摘要第5-6页
Abstract第6页
第1章 前言第11-23页
    1.1 菊粉第11-13页
        1.1.1 菊粉的结构特征第11-12页
        1.1.2 菊粉的来源第12-13页
        1.1.3 菊粉的性质第13页
    1.2 菊粉酶第13-21页
        1.2.1 菊粉酶的分类第13-14页
        1.2.2 菊粉酶的来源第14页
        1.2.3 菊粉酶的性质第14-18页
        1.2.4 菊粉酶的用途第18-19页
        1.2.5 菊粉酶的研究进展第19-21页
    1.3 固定化第21-22页
        1.3.1 固定化简介第21页
        1.3.2 固定化菊粉酶的研究进展第21-22页
    1.4 本课题的研究目的与意义第22页
    1.5 本课题的主要内容第22-23页
第2章 菊粉内切酶产生菌的筛选与鉴定第23-32页
    2.1 引言第23页
    2.2 实验材料第23-27页
        2.2.1 土样来源第23页
        2.2.2 试剂第23-24页
        2.2.3 主要设备和仪器第24-25页
        2.2.4 主要培养基配方第25-27页
        2.2.5 溶液的配制第27页
    2.3 实验方法第27-30页
        2.3.1 产菊粉酶菌株的筛选第27-28页
        2.3.2 菊粉内切酶活性测定第28-29页
        2.3.3 菌种鉴定第29-30页
    2.4 结果与讨论第30-31页
        2.4.1 果糖标准曲线第30页
        2.4.2 菌种筛选第30-31页
        2.4.3 菌种鉴定第31页
    2.5 本章小结第31-32页
第3章 基因的克隆表达第32-60页
    3.1 引言第32-33页
    3.2 实验材料第33-37页
        3.2.1 主要菌株和质粒第33页
        3.2.2 实验仪器第33-34页
        3.2.3 主要试剂第34页
        3.2.4 试剂和培养基的配制第34-37页
    3.3 实验方法第37-46页
        3.3.1 菊粉内切酶基因的克隆第37-38页
        3.3.2 DNA凝胶回收第38-39页
        3.3.3 目的基因与克隆载体的连接第39-40页
        3.3.4 重组质粒的抽提第40页
        3.3.5 菊粉内切酶重组表达载体的构建第40-41页
        3.3.6 转化大肠杆菌并筛选重组子第41页
        3.3.7 质粒线性化第41页
        3.3.8 毕赤酵母GS115感受态的制备第41-42页
        3.3.9 毕赤酵母转化第42页
        3.3.10 遗传霉素抗性筛选第42页
        3.3.11 菌落PCR验证第42-43页
        3.3.12 毕赤酵母诱导表达第43页
        3.3.13 51发酵罐发酵第43-44页
        3.3.14 重组菊粉内切酶的纯化第44页
        3.3.15 考马斯亮蓝发测定蛋白质含量第44页
        3.3.16 SDS-PAGE蛋白电泳第44-45页
        3.3.17 重组菊粉内切酶酶学性质研究第45页
        3.3.18 重组菊粉内切酶水解产物分析第45-46页
    3.4 结果与讨论第46-54页
        3.4.1 菊粉内切酶基因的克隆第46-47页
        3.4.3 重组质粒INUCL1-9K的线性化第47页
        3.4.4 重组毕赤酵母阳性转化子的摇瓶发酵第47-48页
        3.4.5 51发酵罐发酵结果分析第48-49页
        3.4.6 蛋白标准曲线的绘制第49页
        3.4.7 重组菊粉内切酶的纯化第49-50页
        3.4.8 酶学性质研究第50-54页
    3.5 重组INUC1水解菊粉和洋姜粉产物分析第54-57页
        3.5.1 薄层层析分析第54-55页
        3.5.2 高效液相色谱分析第55-57页
    3.6 INUCL1序列与活性中心分析第57-58页
    3.7 INUCL1的系统进化树分析第58-59页
    3.8 本章小结第59-60页
第4章 重组INUCL1的固定化研究第60-67页
    4.1 引言第60页
    4.2 实验材料第60-61页
        4.2.1 试剂第60页
        4.2.2 主要设备和仪器第60-61页
    4.3 实验内容与方法第61-63页
        4.3.1 壳聚糖载体固定化INUCL1第61页
        4.3.2 氨基载体HA固定化INUCL1第61-62页
        4.3.3 环氧基载体EP固定化INUCL1第62页
        4.3.4 大孔阴离子树脂D201固定化INUCL1第62页
        4.3.5 固定化效果的评价第62-63页
    4.4 实验结果第63-66页
        4.4.1 六种固定化方法固定化率和酶活回收率比较第63页
        4.4.2 壳聚糖固定化INUCL1的最适反应温度第63页
        4.4.3 壳聚糖固定化INUCL1的最适反应pH第63-64页
        4.4.4 壳聚糖固定化INUCL1的热稳定性研究第64-65页
        4.4.5 壳聚糖固定化INUCL1的批次稳定性第65页
        4.4.6 壳聚糖固定化INUCL1水解洋姜粉产物分析第65-66页
    4.5 本章小结第66-67页
第5章 菊粉外切酶克隆表达及酶学性质研究第67-78页
    5.1 引言第67页
    5.2 实验材料第67页
        5.2.1 主要菌株和质粒第67页
        5.2.2 主要试剂与仪器第67页
    5.3 实验方法第67-69页
        5.3.1 菊粉外切酶基因的克隆第67-68页
        5.3.2 菊粉外切酶基因的异源表达第68页
        5.3.3 菊粉外切酶的纯化第68页
        5.3.4 菊粉外切酶酶学性质研究第68-69页
    5.4 结果与讨论第69-77页
        5.4.1 菊粉外切酶基因inuZ6的克隆第69页
        5.4.2 菊粉外切酶INUZ6的异源表达第69-70页
        5.4.3 菊粉外切酶INUZ6的纯化第70-71页
        5.4.4 酶学性质研究第71-77页
    5.5 本章小结第77-78页
第6章 结论与展望第78-80页
    6.1 结论第78-79页
    6.2 展望第79-80页
参考文献第80-87页
致谢第87页

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