| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第10-26页 |
| 1.1 课题研究背景和意义 | 第10-11页 |
| 1.2 QuEChERS法 | 第11-12页 |
| 1.3 液相微萃取法 | 第12-23页 |
| 1.3.1 单滴液相微萃取 | 第13页 |
| 1.3.2 中空纤维液相微萃取 | 第13-15页 |
| 1.3.3 中空纤维溶剂棒液相微萃取 | 第15-17页 |
| 1.3.4 分散液液微萃取 | 第17-23页 |
| 1.4 样品检测方法 | 第23-25页 |
| 1.4.1 气相色谱法 | 第23-24页 |
| 1.4.2 液相色谱法 | 第24页 |
| 1.4.3 其他检测方法 | 第24-25页 |
| 1.5 本文的主要研究内容 | 第25-26页 |
| 第2章 实验材料及方法 | 第26-31页 |
| 2.1 试剂和材料 | 第26-27页 |
| 2.2 实验仪器 | 第27-28页 |
| 2.3 溶液配制 | 第28-29页 |
| 2.3.1 标准储备液的配制 | 第28页 |
| 2.3.2 工作溶液的配制 | 第28页 |
| 2.3.3 流动相的配制 | 第28页 |
| 2.3.4 其他溶液配制 | 第28-29页 |
| 2.4 实验方法 | 第29-31页 |
| 2.4.1 高效液相色谱条件 | 第29-30页 |
| 2.4.2 样品制备 | 第30页 |
| 2.4.3 样品前处理 | 第30-31页 |
| 第3章 三类抗生素高效液相色谱同时检测方法研究 | 第31-44页 |
| 3.1 前言 | 第31-32页 |
| 3.2 色谱条件的优化 | 第32-41页 |
| 3.2.1 色谱柱的选择 | 第32-34页 |
| 3.2.2 流动相的组成 | 第34-36页 |
| 3.2.3 流动相的流速 | 第36-38页 |
| 3.2.4 进样溶液的组成 | 第38-39页 |
| 3.2.5 梯度洗脱条件的优化 | 第39-41页 |
| 3.3 标准曲线的绘制 | 第41-43页 |
| 3.4 小结 | 第43-44页 |
| 第4章 鱼肉中抗生素多残留的高效液相色谱同时检测方法的研究 | 第44-55页 |
| 4.1 前言 | 第44-45页 |
| 4.2 萃取条件优化 | 第45-51页 |
| 4.2.1 QuEChERS萃取溶剂的选择与优化 | 第45-47页 |
| 4.2.2 分散剂的体积优化 | 第47-48页 |
| 4.2.3 微萃取剂-水的体积的优化 | 第48-49页 |
| 4.2.4 微萃取剂-水的pH的优化 | 第49-50页 |
| 4.2.5 环己烷体积的优化 | 第50-51页 |
| 4.2.6 微萃取时间的优化 | 第51页 |
| 4.3 方法评价 | 第51-54页 |
| 4.3.1 工作曲线、线性范围和检出限 | 第51-52页 |
| 4.3.2 样品分析 | 第52-54页 |
| 4.4 小结 | 第54-55页 |
| 第5章 反相-分散液液微萃取黄油中三类抗生素 | 第55-59页 |
| 5.1 前言 | 第55-56页 |
| 5.2 萃取方案 | 第56-57页 |
| 5.2.1 萃取方案 1 | 第56页 |
| 5.2.2 萃取方案 2 | 第56页 |
| 5.2.3 残渣分析 | 第56-57页 |
| 5.3 萃取方案的对比 | 第57-58页 |
| 5.4 小结 | 第58-59页 |
| 结论 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-69页 |
| 致谢 | 第69页 |