摘要 | 第5-9页 |
Abstract | 第9-13页 |
缩略语中英文对照表 | 第17-18页 |
绪论 | 第18-22页 |
第一部分 ABCG2在肾透明细胞癌组织中的表达及意义 | 第22-36页 |
1 前言 | 第23-24页 |
2 材料和方法 | 第24-26页 |
2.1 主要仪器和设备 | 第24-25页 |
2.2 主要试剂和抗体: | 第25页 |
2.3 切片的制作和预处理 | 第25页 |
2.4 免疫组化的实验步骤 | 第25-26页 |
2.5 结果判断 | 第26页 |
2.6 统计分析 | 第26页 |
3 结果 | 第26-32页 |
3.1 ABCG2在肾癌组织及非肾癌组织中的表达情况: | 第26-28页 |
3.2 ABCG2表达与肾癌患者临床病理学参数间的相关性 | 第28-29页 |
3.3 ABCG2表达与转移的关系分析 | 第29页 |
3.4 ABCG2表达与生存期的关系分析 | 第29-32页 |
4 讨论 | 第32-35页 |
4.1 肾癌的治疗研究进展 | 第32-33页 |
4.2 ABCG2与肿瘤疾病的关系 | 第33-34页 |
4.3 ABCG2与肾癌研究 | 第34-35页 |
5 结论 | 第35-36页 |
第二部分 抑制ABCG2对舒尼替尼治疗肾癌的体外研究—ABCG2表达与肾癌药物抵抗性之间的关系初探 | 第36-64页 |
1 前言 | 第37-39页 |
2 材料和方法 | 第39-44页 |
2.1 实验细胞株的筛选 | 第39-41页 |
2.2 舒尼替尼在肾癌细胞中的IC50检测 | 第41页 |
2.3 舒尼替尼处理癌细胞株后检测细胞凋亡 | 第41-42页 |
2.4 FTC和Sunitinib联合处理对细胞活性的影响 | 第42页 |
2.5 FTC和sunitinib联合处理对细胞凋亡的影响 | 第42-43页 |
2.6 FTC处理检测sunitinib药物在细胞中积累和外排的情况 | 第43页 |
2.7 细胞克隆形成实验 | 第43-44页 |
2.8 细胞迁移实验 | 第44页 |
3 结果 | 第44-55页 |
3.1 实验细胞株的筛选 | 第44-45页 |
3.2 肾癌细胞中舒尼替尼IC50的检测 | 第45-46页 |
3.3 舒尼替尼处理癌细胞株后检测细胞凋亡 | 第46-48页 |
3.4 FTC和Sunitinib联合处理对细胞活性的影响 | 第48-49页 |
3.5 FTC和Sunitinib联合处理对细胞凋亡的影响 | 第49-50页 |
3.6 FTC处理检测Sunitinib药物在细胞中积累和外排的情况 | 第50-52页 |
3.7 细胞克隆形成实验 | 第52-54页 |
3.8 细胞迁移实验 | 第54-55页 |
4 讨论 | 第55-63页 |
4.1 RCC进入药物靶向治疗时代 | 第55-56页 |
4.2 ABCG2的基本特征和功能 | 第56-58页 |
4.3 ABCG2与肿瘤的相关研究 | 第58-60页 |
4.4 抑制ABCG2对舒尼替尼治疗肾癌的体外研究 | 第60-63页 |
5 结论 | 第63-64页 |
第三部分 FTC和舒尼替尼联合治疗在 786-O人肾癌裸鼠模型中的研究 | 第64-79页 |
1 前言 | 第65-66页 |
2 材料和方法 | 第66-68页 |
2.1 实验材料 | 第66页 |
2.2 786-O人肾癌细胞株的复苏和培养 | 第66-67页 |
2.3 动物模型的建立 | 第67页 |
2.4 荷瘤动物的药物干预 | 第67页 |
2.5 数据测量及处理 | 第67-68页 |
3 结果 | 第68-72页 |
3.1 各实验组移植瘤体积的测定 | 第68-70页 |
3.2 实验结束时移植瘤的重量及瘤重抑制率 | 第70-72页 |
4 讨论 | 第72-78页 |
4.1 肾癌的药物抵抗 | 第72-73页 |
4.2 ABCG2抑制剂的选择 | 第73-74页 |
4.3 动物模型的建立 | 第74-75页 |
4.4 荷瘤动物的药物干预 | 第75-76页 |
4.5 裸鼠移植瘤的治疗效果 | 第76-78页 |
4.6 实验的局限性 | 第78页 |
5 结论 | 第78-79页 |
全文结论 | 第79页 |
展望 | 第79-80页 |
参考文献 | 第80-92页 |
致谢 | 第92-94页 |
学术论文和科研成果目录 | 第94页 |