摘要 | 第7-9页 |
ABSTRACT | 第9-11页 |
符号说明 | 第12-13页 |
第1章 绪论 | 第13-23页 |
1.1 引言 | 第13页 |
1.2 生物催化剂 | 第13-15页 |
1.2.1 蛋白质的酶类 | 第14页 |
1.2.2 具有催化活性的RNA和DNA | 第14-15页 |
1.3 模拟酶 | 第15-19页 |
1.3.1 过氧化物模拟酶 | 第15-17页 |
1.3.2 氧化物模拟酶 | 第17-18页 |
1.3.3 过氧化氢模拟酶 | 第18-19页 |
1.3.4 其他模拟酶 | 第19页 |
1.4 无花果蛋白酶 | 第19-20页 |
1.5 本论文的研究内容及意义 | 第20-23页 |
第2章 无花果蛋白酶过氧化物模拟酶性质研究 | 第23-37页 |
2.1 引言 | 第23-24页 |
2.2 实验部分 | 第24-26页 |
2.2.1 试剂与仪器 | 第24页 |
2.2.2 缓冲溶液的配置 | 第24-25页 |
2.2.3 电子顺磁共振(EPR)实验 | 第25页 |
2.2.4 除去二次结晶无花果蛋白酶中的半胱氨酸 | 第25页 |
2.2.5 初速度的计算 | 第25-26页 |
2.2.6 动力学实验方法 | 第26页 |
2.3 结果与讨论 | 第26-35页 |
2.3.1 无花果蛋白酶具有过氧化物模拟酶活性 | 第26-28页 |
2.3.2 无花果蛋白酶过氧化物模拟酶活性条件优化 | 第28-29页 |
2.3.3 无花果蛋白酶过氧化物模拟酶活性稳态动力学及催化机理 | 第29-31页 |
2.3.4 无花果蛋白酶过氧化物模拟酶活性与HRP的稳定性比较 | 第31-32页 |
2.3.5 无花果蛋白酶过氧化物模拟酶活性来源于它本身 | 第32-34页 |
2.3.6 氯化汞和碘乙酸对无花果蛋白酶过氧化物模拟酶活性的影响 | 第34-35页 |
2.4 结论 | 第35-37页 |
第3章 基于无花果蛋白酶过氧化物模拟酶性质检测细胞中释放的过氧化氢 | 第37-43页 |
3.1 引言 | 第37-38页 |
3.2 实验部分 | 第38-39页 |
3.2.1 试剂与仪器 | 第38页 |
3.2.2 缓冲溶液的配置 | 第38页 |
3.2.3 人乳腺癌细胞培养 | 第38页 |
3.2.4 H_2O_2检测的标准曲线 | 第38-39页 |
3.2.5 测定细胞中释放的H_2O_2 | 第39页 |
3.3 结果与讨论 | 第39-42页 |
3.3.1 无花果蛋白酶具有过氧化物模拟酶性质 | 第39-40页 |
3.3.2 H_2O_2检测条件优化 | 第40页 |
3.3.3 细胞中释放的H_2O_2检测 | 第40-42页 |
3.4 结论 | 第42-43页 |
第4章 基于无花果蛋白酶过氧化物模拟酶性质检测半胱氨酸 | 第43-51页 |
4.1 引言 | 第43-44页 |
4.2 实验部分 | 第44-45页 |
4.2.1 试剂与仪器 | 第44页 |
4.2.2 缓冲溶液的配置 | 第44-45页 |
4.2.3 半胱氨酸的检测 | 第45页 |
4.2.4 半胱氨酸检测方法的选择性 | 第45页 |
4.2.5 人血清样品处理 | 第45页 |
4.3 结果与讨论 | 第45-50页 |
4.3.1 半胱氨酸传感的检测原理 | 第45-46页 |
4.3.2 半胱氨酸传感的条件优化 | 第46-48页 |
4.3.3 半胱氨酸浓度测定 | 第48-49页 |
4.3.4 半胱氨酸浓度测定的选择性 | 第49-50页 |
4.3.5 人血清中的半胱氨酸浓度测定 | 第50页 |
4.4 结论 | 第50-51页 |
第5章 基于无花果蛋白酶过氧化物模拟酶性质检测汞离子 | 第51-57页 |
5.1 引言 | 第51-52页 |
5.2 实验部分 | 第52页 |
5.2.1 试剂 | 第52页 |
5.2.2 仪器 | 第52页 |
5.2.3 缓冲溶液的配置 | 第52页 |
5.2.4 汞离子的检测 | 第52页 |
5.3 结果与讨论 | 第52-56页 |
5.3.1 汞离子检测的原理 | 第52-54页 |
5.3.2 汞离子检测条件优化 | 第54-55页 |
5.3.3 汞离子检测 | 第55-56页 |
5.4 结论 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-71页 |
硕士期间已发表研究成果 | 第71-73页 |
致谢 | 第73-74页 |