| 摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3-4页 |
| 引言 | 第7-8页 |
| 资料与方法 | 第8-9页 |
| 1 临床资料 | 第8页 |
| 2 主要试剂 | 第8-9页 |
| 3 PV-6000 免疫组织化学染色 | 第9页 |
| 4 免疫组化结果判定 | 第9页 |
| 结果 | 第9-10页 |
| 1 TLR-4 在BCG免疫治疗失败NMIBC患者膀胱癌组织中的表达情况 | 第9页 |
| 2 B7-H1在BCG免疫治疗失败NMIBC患者膀胱癌组织中的表达情况 | 第9-10页 |
| 3 TLR-4 和B7-H1在BCG免疫治疗失败NMIBC患者中表达的相关性 | 第10页 |
| 讨论 | 第10-11页 |
| 材料与试剂 | 第11-14页 |
| 1 实验动物 | 第11页 |
| 2 主要试剂 | 第11-12页 |
| 3 主要仪器设备 | 第12页 |
| 4 各种工作液的配制 | 第12-14页 |
| 实验方法及步骤 | 第14-20页 |
| 1 实验动物麻醉及药物膀胱灌注方法 | 第14-16页 |
| 1.1 SD大鼠抓取方法及麻醉方式 | 第14-15页 |
| 1.2 MNU溶液膀胱灌注方法 | 第15-16页 |
| 2. MNU组大鼠成瘤情况的鉴定 | 第16-20页 |
| 2.1 原位膀胱肿瘤动物活体检测方法 | 第16页 |
| 2.2 病理组织学分析 | 第16-17页 |
| 2.3 大鼠原位膀胱癌的分组处理 | 第17页 |
| 2.4 比较各处理组膀胱肿瘤的体积大小。 | 第17页 |
| 2.5 流式细胞术检测大鼠膀胱癌细胞表面B7-H1表达水平 | 第17-19页 |
| 2.5.1 单细胞悬液制备 | 第17-18页 |
| 2.5.2 细胞计数 | 第18页 |
| 2.5.3 细胞表面直接免疫荧光染色操作步骤 | 第18-19页 |
| 2.6 统计学方法采用 | 第19-20页 |
| 实验结果 | 第20-24页 |
| 1 诱建模型一般情况观察 | 第20页 |
| 2 原位膀胱肿瘤细胞鉴定 | 第20-21页 |
| 3 各处理组大鼠一般情况观察 | 第21页 |
| 4 各处理组膀胱肿瘤的体积大小 | 第21-22页 |
| 5 膀胱癌细胞各组B7-H1分子表达水平 | 第22-24页 |
| 讨论 | 第24-27页 |
| 结论 | 第27-28页 |
| 参考文献 | 第28-31页 |
| 综述 免疫相关因素在膀胱癌免疫治疗中的研究进展 | 第31-40页 |
| 综述的参考文献 | 第37-40页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第40-41页 |
| 附录 | 第41-42页 |
| 致谢 | 第42-43页 |
