| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第一部分：文献综述 | 第13-33页 |
| 第一节、奶牛真胃变位的研究进展 | 第13-19页 |
| 1. 病因及机理 | 第13-16页 |
| 1.1. 品种和遗传 | 第13-14页 |
| 1.2. 饲养管理 | 第14页 |
| 1.3. 分娩 | 第14-15页 |
| 1.4. 年龄、产奶量 | 第15页 |
| 1.5. 营养代谢性疾病和感染性疾病 | 第15页 |
| 1.6. 神经调节紊乱 | 第15页 |
| 1.7. 机械性因素 | 第15-16页 |
| 1.8. 其他因素 | 第16页 |
| 2. 临床诊断 | 第16-17页 |
| 2.1. LDA的临床诊断 | 第16页 |
| 2.2. RDA的临床诊断 | 第16-17页 |
| 2.3. 实验室辅助诊断 | 第17页 |
| 2.4. 鉴别诊断 | 第17页 |
| 3. 治疗 | 第17-19页 |
| 3.1. 保守治疗 | 第17-18页 |
| 3.2. 手术治疗 | 第18-19页 |
| 4. 预防 | 第19页 |
| 第二节、挥发性脂肪酸在反刍动物体内作用的研究进展 | 第19-23页 |
| 1. VFA的产生 | 第19-20页 |
| 2. VFA的吸收和代谢 | 第20页 |
| 3. VFA的主要作用 | 第20-21页 |
| 3.1. 提供能量 | 第20-21页 |
| 3.2. 维持正常瘤胃环境 | 第21页 |
| 3.3. 参与内分泌调节 | 第21页 |
| 3.4. 抵御病原微生物 | 第21页 |
| 3.5. 其他作用 | 第21页 |
| 4. 影响瘤胃内VFA浓度和组成的主要因素 | 第21-23页 |
| 4.1. 日粮组成 | 第22页 |
| 4.2. 饲料加工处理与饲喂方式 | 第22页 |
| 4.3. 动物年龄与采食时间 | 第22-23页 |
| 4.4. 瘤胃微生物 | 第23页 |
| 4.5. 瘤胃内pH值 | 第23页 |
| 5. VFA对真胃平滑肌收缩功能的研究进展 | 第23页 |
| 第三节、毒蕈乙酰胆碱受体、一氧化氮合酶的研究进展 | 第23-28页 |
| 1. 毒蕈乙酰胆碱受体的研究进展 | 第24-26页 |
| 1.1. M受体的分型 | 第24页 |
| 1.2. M受体的分布与功能 | 第24-25页 |
| 1.3. M受体与胃肠平滑肌收缩功能的研究进展 | 第25-26页 |
| 2. 一氧化氮合酶的研究进展 | 第26-27页 |
| 2.1. NOS的分型 | 第26页 |
| 2.2. NO的生理作用 | 第26页 |
| 2.3. NO与胃肠平滑肌收缩功能的研究进展 | 第26-27页 |
| 3. 课题的研究意义 | 第27-28页 |
| 参考文献 | 第28-33页 |
| 第二部分：试验研究 | 第33-77页 |
| 试验一 瘤胃内灌注乙酸对山羊血常规及生化指标的影响 | 第33-43页 |
| 1. 材料 | 第33页 |
| 1.1. 试验动物 | 第33页 |
| 1.2. 主要仪器 | 第33页 |
| 1.3. 主要试剂 | 第33页 |
| 2. 试验方法 | 第33-34页 |
| 2.1. 试验动物分组 | 第33-34页 |
| 2.2. 血液样品的采集和测定 | 第34页 |
| 2.3. 数据处理 | 第34页 |
| 3. 结果 | 第34-39页 |
| 3.1. 血常规检测变化 | 第34-36页 |
| 3.2. 肝、肾功能及相关指标检测结果 | 第36-39页 |
| 4. 讨论 | 第39-41页 |
| 参考文献 | 第41-43页 |
| 试验二 瘤胃内灌注乙酸对山羊瘤胃液pH值和VFA浓度的影响 | 第43-55页 |
| 1. 材料 | 第43-44页 |
| 1.1. 试验动物 | 第43页 |
| 1.2. 主要仪器 | 第43页 |
| 1.3. 主要试剂 | 第43-44页 |
| 1.4. 相关试剂的配制 | 第44页 |
| 2. 方法 | 第44-48页 |
| 2.1. 瘤胃液样品的采集 | 第45页 |
| 2.2. 瘤胃液pH值的测定 | 第45页 |
| 2.3. 瘤胃液VFA浓度的测定 | 第45-47页 |
| 2.4. 结果计算与统计分析 | 第47-48页 |
| 3. 结果 | 第48-51页 |
| 3.1. 瘤胃液pH的变化 | 第48-49页 |
| 3.2. 瘤胃液中VFA浓度的变化 | 第49-51页 |
| 4. 讨论 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-55页 |
| 试验三 瘤胃内灌注乙酸对山羊真胃组织结构的影响 | 第55-63页 |
| 1. 材料 | 第55-56页 |
| 1.1. 试验动物 | 第55页 |
| 1.2. 主要仪器及用品 | 第55页 |
| 1.3. 主要试剂 | 第55-56页 |
| 1.4. 相关试剂的配制 | 第56页 |
| 2. 方法 | 第56-57页 |
| 2.1. 组织样品的采集与固定 | 第56页 |
| 2.2. 石蜡切片的制作 | 第56-57页 |
| 2.3. HE染色 | 第57页 |
| 3. 结果 | 第57-60页 |
| 4. 讨论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-63页 |
| 试验四 瘤胃内灌注乙酸对山羊真胃M_2、M_3和eNOS的基因mRNA表达的影响 | 第63-77页 |
| 1. 材料 | 第63-64页 |
| 1.1. 试验动物 | 第63页 |
| 1.2. 主要仪器 | 第63页 |
| 1.3. 主要试剂 | 第63-64页 |
| 1.4. 相关试剂的配制 | 第64页 |
| 2. 方法 | 第64-68页 |
| 2.1. 样品采集 | 第64页 |
| 2.2. 实时荧光定量PCR检测真胃组织中相关基因表达 | 第64-68页 |
| 2.2.1. 引物设计 | 第64-65页 |
| 2.2.2. 组织RNA的提取 | 第65-66页 |
| 2.2.3. RNA浓度和完整性检测 | 第66页 |
| 2.2.4. cDNA的合成 | 第66-67页 |
| 2.2.5. cDNA浓度的调整 | 第67页 |
| 2.2.6. RT-PCR反应 | 第67页 |
| 2.2.7. 基因相对表达量的计算 | 第67-68页 |
| 2.3. 结果统计分析 | 第68页 |
| 3. 结果 | 第68-72页 |
| 3.1. 总RNA提取结果 | 第68页 |
| 3.2. 引物特异性 | 第68-69页 |
| 3.3. M_2基因相对表达量检测结果 | 第69-71页 |
| 3.4. M_3基因相对表达量变化 | 第71-72页 |
| 3.5. eNOS基因相对表达量变化 | 第72页 |
| 4. 讨论 | 第72-75页 |
| 参考文献 | 第75-77页 |
| 全文结论 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
