| 致谢 | 第5-6页 |
| 本课题受以下基金资助 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| 英文摘要 | 第9-10页 |
| 中英文缩写对照表 | 第11-15页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 第一部分 锑剂诱导细胞分化及PML的溶解性改变和翻译后修饰 | 第18-33页 |
| 1.1 实验材料与仪器 | 第18-19页 |
| 1.2 实验方法 | 第19-26页 |
| 1.2.1 NB4细胞培养、冻存、复苏 | 第19页 |
| 1.2.2 流式细胞术检测细胞表面CD11b的表达 | 第19-20页 |
| 1.2.3 免疫荧光共聚焦检测PML及其降解过程的相关蛋白 | 第20页 |
| 1.2.4 Western Blot法检测相关蛋白表达 | 第20-24页 |
| 1.2.5 细胞转染 | 第24-25页 |
| 1.2.6 瑞氏吉姆萨染色 | 第25页 |
| 1.2.7 MTT法统计细胞生存率 | 第25页 |
| 1.2.8 数据统计 | 第25-26页 |
| 1.3 实验结果 | 第26-32页 |
| 1.3.1 MTT法检测药物的细胞毒性 | 第26页 |
| 1.3.2 吉姆萨染色法检测细胞形态的变化 | 第26-27页 |
| 1.3.3 流式细胞术CD11b检测细胞分化 | 第27页 |
| 1.3.4 Western Blot法检测分化蛋白的表达 | 第27-28页 |
| 1.3.5 Western Blot法检测PML-RARa融合蛋白的表达 | 第28页 |
| 1.3.6 Western Blot法检测PML以及PML-RARa溶解性变化和翻译后修饰 | 第28-29页 |
| 1.3.7 Western Blot法检测PML蛋白修饰情况 | 第29-30页 |
| 1.3.8 免疫荧光检测NB4细胞核小体形成情况 | 第30-31页 |
| 1.3.9 免疫荧光检测293T细胞核小体形成情况 | 第31-32页 |
| 1.4 实验小结 | 第32-33页 |
| 第二部分 锑剂氧化苯锑对砷剂抵抗型PML突变体的影响 | 第33-37页 |
| 2.1 实验结果 | 第33-36页 |
| 2.1.1 Western Blot法检测PML蛋白的表达 | 第33页 |
| 2.1.2 免疫荧光检测293T细胞核小体形成情况 | 第33-34页 |
| 2.1.3 Western Blot法检测PML蛋白的表达 | 第34-35页 |
| 2.1.4 Western Blot法检测凋亡相关蛋白的表达 | 第35-36页 |
| 2.2 实验小结 | 第36-37页 |
| 第三部分 锌指结构的重要性 | 第37-42页 |
| 3.1 实验结果 | 第37-41页 |
| 3.1.1 Western Blot法检测镉处理后的蛋白表达 | 第37-38页 |
| 3.1.2 免疫荧光检测293T细胞核小体形成情况 | 第38-39页 |
| 3.1.3 Western Blot法检测锌螯合剂邻菲罗啉蛋白表达 | 第39-40页 |
| 3.1.4 免疫荧光检测293T细胞核小体形成情况 | 第40-41页 |
| 3.2 实验小结 | 第41-42页 |
| 讨论 | 第42-47页 |
| 论文创新点 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-54页 |
| 综述 | 第54-69页 |
| 参考文献 | 第61-69页 |
| 作者简历及其硕士研究生在读期间取得的科研成果 | 第69页 |
