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基于牛布鲁菌外膜蛋白OMP19、OMP22和OMP28三种重组蛋白的ELISA检测方法研究

摘要第5-7页
ABSTRACT第7-8页
文献综述第13-21页
    第一章 布鲁菌病及其检测技术第13-21页
        1.1 布鲁菌病病原学第13-14页
        1.2 布鲁菌病流行病学第14-15页
        1.3 布鲁菌病检测方法研究进展第15-18页
            1.3.1 病原学检测方法第15-16页
            1.3.2 血清学检测方法第16-17页
                1.3.2.1 全乳环状实验(MRT)第16页
                1.3.2.2 试管凝集实验(SAT)第16页
                1.3.2.3 虎红平板凝集实验(RBPT)第16页
                1.3.2.4 补体结合实验(CFT)第16页
                1.3.2.5 酶联免疫吸附实验(ELISA)第16-17页
                1.3.2.6 荧光偏振试验(FPA)第17页
                1.3.2.7 胶体金免疫层析法(GICA)第17页
            1.3.3 分子生物学检测方法第17-18页
                1.3.3.1 PCR检测法第17-18页
                1.3.3.2 荧光定量PCR检测法第18页
                1.3.3.3 环介导等温扩增技术(LAMP)第18页
        1.4 布鲁菌外膜蛋白OMP19、OMP22、OMP28研究进展第18-19页
        1.5 本研究目的意义第19-21页
试验研究第21-51页
    第二章 布鲁菌外膜蛋白OMP19、OMP22、OMP28的原核表达第21-37页
        2.1 材料第21-23页
            2.1.1 菌种和载体第21页
            2.1.2 主要试剂及相关溶液第21-22页
            2.1.3 主要使用仪器第22-23页
        2.2 方法第23-31页
            2.2.1 引物的设计与合成第23页
            2.2.2 OMP19、OMP22、OMP28基因的扩增第23-24页
            2.2.3 目的基因片段的回收第24页
            2.2.4 原核表达载体pCold-TF的抽提第24-25页
            2.2.5 原核载体与目的基因的双酶切第25-26页
            2.2.6 原核表达载体与目的基因的连接与克隆第26-27页
            2.2.7 重组质粒的阳性鉴定第27-28页
                2.2.7.1 重组质粒的PCR鉴定第27页
                2.2.7.2 重组质粒的双酶切鉴定第27-28页
            2.2.8 重组蛋白的诱导表达第28页
            2.2.9 重组蛋白的SDS-PAGE分析第28-29页
            2.2.10 重组表达蛋白的反应原性分析第29页
            2.2.11 OMP19、OMP22、OMP28重组蛋白的纯化第29-30页
            2.2.12 测定纯化蛋白的浓度第30-31页
        2.3 结果与分析第31-35页
            2.3.1 OMP19、OMP22、OMP28重组表达载体的构建第31-32页
            2.3.2 重组表达质粒的双酶切鉴定结果第32-33页
            2.3.3 重组质粒的序列测定第33页
            2.3.4 重组蛋白的SDS-PAGE及Western blot分析第33-35页
        2.4 讨论第35-37页
    第三章 基于布鲁菌OMP19、OMP22和OMP28三种重组蛋白的iELISA方法研究第37-51页
        3.1 材料第37页
            3.1.1 血清、二抗第37页
            3.1.2 主要试剂及相关溶液第37页
        3.2 方法第37-40页
            3.2.1 选择最适的混合抗原包被浓度和酶标二抗稀释度第37-38页
            3.2.2 选择最适的一抗稀释度第38页
            3.2.3 选择最适的包被条件第38页
            3.2.4 选择最适的封闭液第38页
            3.2.5 选择封闭时间第38页
            3.2.6 选择最适的一抗反应时间第38页
            3.2.7 选择酶标最适的二抗反应时间第38-39页
            3.2.8 选择最适的显色液和显色时间第39页
            3.2.9 选择最适的终止条件第39页
            3.2.10 确定临界值(cut off value)第39页
            3.2.11 特异性试验第39页
            3.2.12 灵敏度试验第39页
            3.2.13 重复性试验第39页
            3.2.14 样品检测与评价第39-40页
                3.2.14.1 iELISA检测第40页
                3.2.14.2 RBPT检测第40页
                3.2.14.3 IDEXX试剂盒检测第40页
                3.2.14.4 数据比较第40页
        3.3 结果与分析第40-48页
            3.3.1 最适抗原包被浓度和酶标二抗最适稀释度的确定第40-41页
            3.3.2 最适一抗稀释度的选择结果第41页
            3.3.3 最适包被条件的选择结果第41-42页
            3.3.4 最适封闭液的选择结果第42-43页
            3.3.5 最适封闭时间的选择结果第43页
            3.3.6 最适一抗反应时间的选择结果第43-44页
            3.3.7 最适酶标二抗反应时间的选择结果第44页
            3.3.8 最适显色液和显色时间的选择结果第44-45页
            3.3.9 最适终止条件的选择结果第45-46页
            3.3.10 确定临界值(cut off value)第46页
            3.3.11 特异性试验结果第46页
            3.3.12 灵敏性试验结果第46-47页
            3.3.13 重复性试验结果第47页
            3.3.14 评价试验结果第47-48页
        3.4 讨论第48-51页
结论部分第51-52页
    第四章 试验结论第51-52页
参考文献第52-57页
致谢第57页

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