| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 英文缩写词 | 第11-12页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 第一章 母猪早孕诊断及粪样孕酮的研究 | 第14-22页 |
| 1 养猪在我国畜牧业中的地位与发展现状 | 第14页 |
| ·养猪在我国畜牧业中的地位 | 第14页 |
| ·我国养猪业的发展现状 | 第14页 |
| 2 母猪早期妊娠诊断的重要性 | 第14-15页 |
| 3 母猪早期妊娠诊断的几种方法 | 第15-18页 |
| ·超声波诊断法 | 第15-16页 |
| ·免疫测定法 | 第16-18页 |
| ·孕酮生物传感器 | 第18页 |
| 4 孕酮在母猪体内的生物学作用及存在形式 | 第18-19页 |
| 5 粪样孕酮检测在妊娠诊断上的研究 | 第19-20页 |
| 6 ELISA法测定粪样中性激素含量的应用前景 | 第20页 |
| 7 本实验的研究目的和意义 | 第20-22页 |
| 第二章 母猪粪样孕酮ELISA检测方法的建立 | 第22-40页 |
| 1 材料 | 第22-24页 |
| ·主要仪器设备 | 第22-23页 |
| ·主要试剂 | 第23页 |
| ·主要配制的溶液 | 第23-24页 |
| 2 方法 | 第24-28页 |
| ·ELISA的反应原理和流程 | 第24-25页 |
| ·孕酮抗体的制备及检测 | 第25-26页 |
| ·孕酮-辣根过氧化物酶结合物的制备 | 第26页 |
| ·酶标板均一性检测 | 第26页 |
| ·抗体包被时间的选择 | 第26-27页 |
| ·抗体包被液的选择 | 第27页 |
| ·孕酮抗体最佳包被浓度和酶标孕酮工作浓度的选择 | 第27页 |
| ·最佳封闭液的选择 | 第27页 |
| ·确定底物体系中OPD的最佳浓度 | 第27页 |
| ·最适过氧化氢浓度的选择 | 第27-28页 |
| ·最佳显色时间的选择 | 第28页 |
| ·标准曲线的制作 | 第28页 |
| ·方法学鉴定 | 第28页 |
| 3 结果 | 第28-36页 |
| ·酶标反应板均一性检测 | 第28-29页 |
| ·抗体包被时间的确定 | 第29页 |
| ·抗体包被液的确定 | 第29-30页 |
| ·确定抗体最佳包被浓度 | 第30页 |
| ·酶标抗原最佳工作浓度 | 第30-31页 |
| ·确定最佳封闭液 | 第31页 |
| ·确定最佳OPD底物浓度 | 第31-32页 |
| ·确定最佳过氧化氢浓度 | 第32-33页 |
| ·确定最适显色时间 | 第33页 |
| ·标准曲线的制作 | 第33-34页 |
| ·对建立的方法进行方法学鉴定 | 第34-36页 |
| 4 讨论 | 第36-39页 |
| ·竞争性ELISA法 | 第36页 |
| ·抗原和抗体 | 第36-37页 |
| ·孕酮结合物 | 第37页 |
| ·包被条件 | 第37页 |
| ·封闭与洗涤 | 第37-38页 |
| ·显色系统 | 第38页 |
| ·标准曲线的建立 | 第38页 |
| ·ELISA方法学鉴定 | 第38-39页 |
| 5 小结 | 第39-40页 |
| 第三章 酶免疫测定法检测粪便孕酮进行母猪早孕诊断的研究 | 第40-50页 |
| 1. 材料 | 第40-41页 |
| ·主要仪器设备 | 第40页 |
| ·试验药品及试剂 | 第40页 |
| ·要配置的溶液 | 第40-41页 |
| 2 方法 | 第41-43页 |
| ·粪便收集和粪便溶液的制备 | 第41页 |
| ·粪样稀释液的选择 | 第41页 |
| ·空白样品标准溶液的制备 | 第41页 |
| ·样品测定 | 第41-42页 |
| ·母猪早期妊娠诊断 | 第42-43页 |
| ·不同处理方法对标准曲线的影响 | 第43页 |
| ·标准曲线的制作 | 第43页 |
| ·数据处理 | 第43页 |
| 3 结果 | 第43-48页 |
| ·不同缓冲液稀释粪样的测定比较 | 第43-44页 |
| ·不同处理方法对标准曲线的影响 | 第44-45页 |
| ·标准曲线的制作 | 第45页 |
| ·母猪早期妊娠诊断 | 第45-48页 |
| 4 讨论与结论 | 第48-50页 |
| ·不同缓冲液稀释粪样的测定比较 | 第48页 |
| ·不同处理方法对标准曲线的影响 | 第48-49页 |
| ·母猪早期妊娠诊断 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-54页 |
| 全文结论 | 第54-56页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第56-58页 |
| 致谢 | 第58页 |