摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-11页 |
1 前言 | 第11-17页 |
·野蔷薇的简述 | 第11-12页 |
·野蔷薇的分类地位与形态特征 | 第11页 |
·野生蔷薇属植物资源的开发利用价值 | 第11-12页 |
·成分与功效 | 第12页 |
·多糖研究进展 | 第12-15页 |
·多糖的提取 | 第12-13页 |
·多糖的生物活性 | 第13页 |
·多糖的分离纯化 | 第13-14页 |
·多糖的含量测定与结构分析 | 第14-15页 |
·本课题的研究目的意义,主要内容和创新点 | 第15-17页 |
·研究目的意义 | 第15-16页 |
·主要内容 | 第16页 |
·本论文的创新点 | 第16-17页 |
2 野蔷薇根多糖的提取工艺研究 | 第17-36页 |
·实验材料 | 第17-18页 |
·原料 | 第17页 |
·试剂 | 第17页 |
·仪器设备 | 第17-18页 |
·实验方法 | 第18-20页 |
·原料预处理 | 第18页 |
·野蔷薇根多糖提取工艺流程 | 第18页 |
·超声微波提取 | 第18页 |
·超声微波提取响应面优化实验设计 | 第18-19页 |
·超声微波酶解协同提取 | 第19页 |
·超声微波酶解协同提取响应面优化实验设计 | 第19页 |
·不同提取方法 | 第19-20页 |
·多糖含量的测定 | 第20页 |
·结果与讨论 | 第20-34页 |
·超声微波提取单因素实验 | 第20-23页 |
·响应曲面法优化超声微波提取工艺 | 第23-25页 |
·响应曲面与等高线分析 | 第25-27页 |
·超声微波提取最佳工艺参数的确定及模型验证 | 第27页 |
·超声微波酶解协同提取单因素实验 | 第27-30页 |
·响应曲面法优化超声微波酶解协同提取工艺 | 第30-32页 |
·响应曲面与等高线分析 | 第32-34页 |
·超声-微波酶解协同提取最佳工艺参数的确定及模型验证 | 第34页 |
·不同提取方法比较 | 第34页 |
·本章小结 | 第34-36页 |
3 野蔷薇根多糖的分离纯化 | 第36-56页 |
·实验材料 | 第36-38页 |
·原料 | 第36页 |
·试剂 | 第36-37页 |
·仪器设备 | 第37-38页 |
·实验方法 | 第38-41页 |
·野蔷薇根多糖的分离纯化工艺流程 | 第38页 |
·脱蛋白 | 第38-39页 |
·脱色 | 第39-40页 |
·DEAE-52纤维素离子交换柱层析 | 第40-41页 |
·纯度鉴定 | 第41页 |
·结果与讨论 | 第41-54页 |
·脱蛋白单因素实验结果 | 第41-43页 |
·响应曲面法优化脱蛋白工艺 | 第43-45页 |
·脱蛋白参数的优化与模型验证实验 | 第45-46页 |
·不同脱蛋白方法的比较 | 第46页 |
·脱色单因素实验结果 | 第46-48页 |
·响应曲面法优化脱色工艺 | 第48-50页 |
·脱色参数的优化与模型验证实验 | 第50-51页 |
·DEAE-52纤维素离子交换柱层析的条件选择 | 第51-53页 |
·多糖的DEAE-52纤维素离子交换层析 | 第53页 |
·纯度鉴定 | 第53-54页 |
·本章小结 | 第54-56页 |
4 野蔷薇根多糖初步结构鉴定及生物活性研究 | 第56-66页 |
·实验材料 | 第56-57页 |
·原料 | 第56页 |
·试剂 | 第56-57页 |
·仪器设备 | 第57页 |
·实验方法 | 第57-60页 |
·野蔷薇根多糖组分的基本理化性质 | 第57-58页 |
·野蔷薇根多糖组分的红外光谱测定 | 第58页 |
·野蔷薇根多糖组分的气质联用(CG-MS)测定 | 第58页 |
·抗氧化实验 | 第58-60页 |
·抑菌实验 | 第60页 |
·结果与讨论 | 第60-65页 |
·野蔷薇根多糖组分的基本理化性质分析 | 第60页 |
·红外光谱分析 | 第60-61页 |
·气质联用(GC-MS)分析 | 第61-63页 |
·抗氧化实验结果 | 第63-64页 |
·野蔷薇根多糖抑菌实验结果 | 第64-65页 |
·本章小结 | 第65-66页 |
结论 | 第66-68页 |
参考文献 | 第68-74页 |
在学期间公开发表论文及著作情况 | 第74-75页 |
致谢 | 第75页 |