| 目录 | 第1-9页 |
| 缩写 | 第9-10页 |
| 摘要 | 第10-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 第一部分 文献综述 | 第13-32页 |
| 第一章 蓝藻光保护机制的一些最新研究进展 | 第14-32页 |
| 摘要 | 第14-15页 |
| 1. 引言 | 第15-16页 |
| 2. 响应 | 第16页 |
| 3. 主要机制 | 第16-23页 |
| ·循环电子传递 | 第17-21页 |
| ·发现 | 第17-18页 |
| ·主要途径 | 第18-20页 |
| ·生理功能 | 第20-21页 |
| ·热耗散 | 第21-23页 |
| ·发现 | 第21页 |
| ·主要形式 | 第21-22页 |
| ·生理功能 | 第22-23页 |
| 4. 本研究的目的和意义 | 第23-24页 |
| 参考文献 | 第24-31页 |
| Abstract | 第31-32页 |
| 第二部分 实验 | 第32-69页 |
| 第二章 集胞藻 6803ocp 突变体构建及其分子鉴定 | 第33-43页 |
| 摘要 | 第33-34页 |
| 1. 引言 | 第34页 |
| 2. 材料与方法 | 第34-37页 |
| ·培养条件 | 第34-35页 |
| ·试剂与仪器 | 第35页 |
| ·集胞藻 6803 总 DNA 的提取 | 第35页 |
| ·同源重组载体的构建 | 第35-36页 |
| ·集胞藻 6803 的自然转化和转化子的筛选 | 第36页 |
| ·突变株的 PCR 鉴定 | 第36-37页 |
| ·突变株的 RT-PCR 鉴定 | 第37页 |
| 3. 结果 | 第37-40页 |
| ·同源重组载体 pUC- ocp 的构建 | 第37-38页 |
| ·集胞藻 6803 的自然转化和突变株的筛选 | 第38-39页 |
| ·突变株的分子鉴定 | 第39-40页 |
| 4. 讨论 | 第40页 |
| 参考文献 | 第40-42页 |
| Abstract | 第42-43页 |
| 第三章 集胞藻 6803 中 OCP 蛋白的多克隆抗体制备 | 第43-53页 |
| 摘要 | 第43-44页 |
| 1. 引言 | 第44-45页 |
| 2. 材料与方法 | 第45-48页 |
| ·实验材料与培养条件 | 第45页 |
| ·试剂与仪器 | 第45页 |
| ·集胞藻 6803 总 DNA 的抽提 | 第45页 |
| ·引物设计及目的片段的扩增 | 第45-46页 |
| ·pGEX-5X-1-ocp 表达质粒的构建 | 第46页 |
| ·融合蛋白的诱导表达 | 第46-47页 |
| ·融合蛋白的纯化 | 第47页 |
| ·多克隆抗体的制备及效价测定 | 第47页 |
| ·蛋白免疫印迹分析 | 第47-48页 |
| 3. 结果 | 第48-49页 |
| ·PCR 扩增目的片段 | 第48页 |
| ·验证表达质粒 pGEX-5X-1-ocp | 第48页 |
| ·融合蛋白 GST-OCP 的诱导表达 | 第48页 |
| ·融合蛋白 GST-OCP 的纯化 | 第48-49页 |
| ·多克隆抗体效价的检测 | 第49页 |
| ·蛋白免疫印迹分析抗体特异性 | 第49页 |
| 4. 讨论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-52页 |
| Abstract | 第52-53页 |
| 第四章 OCP 缺失加剧了 ndhS/pgr5 高光敏感的生长表型 | 第53-69页 |
| 摘要 | 第53-54页 |
| 1. 引言 | 第54页 |
| 2. 材料与方法 | 第54-57页 |
| ·培养条件 | 第54-55页 |
| ·固体平板培养 | 第55页 |
| ·细胞数翻倍时间的检测 | 第55页 |
| ·叶绿素荧光参数的测量 | 第55-56页 |
| ·NPQ 测定和 PSII 的活性分析 | 第56页 |
| ·蛋白免疫印迹的分析 | 第56页 |
| ·光合放氧活性的分析 | 第56页 |
| ·荧光淬灭能力的检测 | 第56-57页 |
| ·H2O2含量的检测 | 第57页 |
| 3. 结果 | 第57-64页 |
| ·CET 抵御高光胁迫的贡献大于 NPQ | 第57-59页 |
| ·ndhS/pgr5 背景下，ocp 突变加剧了其高光敏感的生长表型 | 第59-62页 |
| ·CET 和 NPQ 机制相互独立 | 第62-64页 |
| 4. 讨论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-68页 |
| Abstract | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
