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抑癌基因PDCD4对肿瘤和巨噬细胞自噬的抑制效应及其分子机制

中文摘要第1-18页
ABSTRACT第18-25页
符号说明第25-28页
第一节 PDCD4对肿瘤细胞自噬及其相关功能的影响第28-55页
 前言第28-32页
  自噬的生物学特性第28-29页
  自噬的研究及检测方法第29-30页
  自噬与肿瘤的关系第30-31页
  抑癌基因PDCD4生物学特性第31页
  PDCD4抑癌机制研究第31页
  本节研究目的第31-32页
 材料第32-36页
  一、细胞、动物及试剂第32-35页
  二、主要仪器设备及其他第35-36页
 方法第36-47页
  一、肿瘤细胞系的培养第36-37页
  二、DNA质粒准备第37-39页
  三、脂质体转染(Lipofectamine)第39-40页
  四、siPORT NeoFx干扰第40-41页
  五、稳筛细胞系构建及培养第41页
  六、细胞活性检测第41页
  七、Western blot第41-44页
  八、免疫组化第44-45页
  九、免疫荧光第45-47页
  十、裸鼠体内成瘤实验第47页
  十一、统计学分析第47页
 结果第47-50页
  (一) 体外实验发现PDCD4具有抑制肿瘤细胞自噬的作用第47-48页
  (二) 裸鼠移植瘤实验证明PDCD4具有抑制自噬的作用第48-49页
  (三) PDCD4对肿瘤细胞生长的抑制依赖于其对自噬的抑制第49-50页
 讨论第50-54页
 小结第54-55页
第二节 PDCD4对巨噬细胞自噬及其相关功能的影响第55-79页
 前言第55-59页
  自噬调节胆固醇流出第56-57页
  巨噬细胞自噬在动脉粥样硬化中的作用第57-58页
  Pdcd4参与多种炎症性、免疫性及代谢性疾病进程第58-59页
  本节研究目的第59页
 材料第59-62页
  一、细胞、动物及试剂第59-62页
  二、主要仪器设备及其他第62页
 方法第62-70页
  一、巨噬细胞系RAW264.7培养第62页
  二、Wetstern blot第62页
  三、巨噬细胞的分离及鉴定第62-63页
  四、小鼠脾脏淋巴细胞分离第63页
  五、泡沫化细胞形成实验第63-64页
  六、巨噬细胞吞噬功能检测第64页
  七、细胞及组织切片染色第64-65页
  八、MDC染色第65页
  九、自噬的诱导第65-66页
  十、RT-PCR第66-68页
  十一、小鼠动脉粥样硬化模型建立第68页
  十二、血管组织获取与切片的制备第68页
  十三、骨髓细胞移植实验第68-70页
  十四、统计学分析第70页
 结果第70-75页
  (一) Pdcd4能抑制不同刺激诱导的巨噬细胞自噬第70-71页
  (二) Pdcd4介导的自噬对巨噬细胞泡沫化的影响第71-73页
  (三) Pdcd4介导的巨噬细胞自噬在动脉粥样硬化中的作用第73-75页
 讨论第75-78页
 小结第78-79页
第三节 PDCD4抑制自噬的分子机制第79-93页
 前言第79-82页
  BECN1及其结合复合体第79-80页
  ATG5、ATG12、LC3和类泛素连接体系第80-81页
  PDCD4参与蛋白表达调控第81-82页
  本节研究目的第82页
 材料第82-83页
  一、细胞、临床标本、实验动物及试剂第82-83页
  二、主要仪器设备及其他第83页
 方法第83-87页
  一、细胞培养第83-84页
  二、细胞转染、RNA干扰 同第一节第84页
  三、RT-PCR 同第二节第84页
  四、免疫组化及免疫荧光第84页
  五、Western blot第84页
  六、RNA共沉淀实验第84-86页
  七、细胞活性分析第86页
  八、统计学分析第86-87页
 结果第87-89页
  (一) PDCD4抑制ATG5蛋白表达第87-88页
  (二) PDCD4抑制ATG5表达依赖其ma3功能域第88-89页
 讨论第89-91页
 小结第91-93页
附图表第93-123页
 第一节 PDCD4对肿瘤细胞自噬及其相关功能的影响第93-104页
 第二节 PDCD4对巨噬细胞自噬及其相关功能的影响第104-118页
 第三节 PDCD4抑制自噬的分子机制第118-123页
参考文献第123-139页
致谢第139-140页
攻读学位期间发表的学术论文目录第140-141页
附件1第141-154页
附件2第154-198页
附表第198页

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