| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 致谢 | 第8-14页 |
| 一 前言 | 第14-31页 |
| ·巨噬细胞概述 | 第14-15页 |
| ·巨噬细胞的来源及特性 | 第14页 |
| ·巨噬细胞的功能 | 第14-15页 |
| ·植物多糖对巨噬细胞免疫功能的影响 | 第15-23页 |
| ·对巨噬细胞增殖的影响 | 第16-17页 |
| ·对巨噬细胞吞噬功能的影响 | 第17页 |
| ·对巨噬细胞活性氧簇及NO产量的影响 | 第17-18页 |
| ·对巨噬细胞相关因子及趋化因子产量的影响 | 第18-19页 |
| ·对巨噬细胞其它免疫应答的影响 | 第19-23页 |
| ·植物多糖对巨噬细胞活性的调节机制 | 第23-26页 |
| ·CD14和CR3介导的信号通路 | 第23-24页 |
| ·SR介导的信号通路 | 第24页 |
| ·MR介导的信号通路 | 第24-25页 |
| ·Dectin-1介导的信号通路 | 第25页 |
| ·TLR4/2介导的信号通路 | 第25-26页 |
| ·多糖中LPS污染的检测 | 第26-29页 |
| ·多糖特异性法 | 第26页 |
| ·罗丹明追踪法 | 第26-27页 |
| ·多粘菌素B（PMB）屏蔽法 | 第27页 |
| ·鲎试剂检测法 | 第27页 |
| ·基因缺失小鼠法 | 第27-29页 |
| ·本文研究目的意义内容及技术路线图 | 第29-31页 |
| ·研究目的及意义 | 第29页 |
| ·研究内容 | 第29-30页 |
| ·主要技术路线 | 第30-31页 |
| 二 材料与方法 | 第31-39页 |
| ·实验材料及动物 | 第31页 |
| ·主要试剂 | 第31-32页 |
| ·主要仪器 | 第32-33页 |
| ·实验方法 | 第33-39页 |
| ·霍山石斛粗多糖的分级分离 | 第33页 |
| ·霍山石斛水洗糖HPS1的纯化 | 第33页 |
| ·多糖相对分子量及均一性的测定 | 第33-34页 |
| ·多糖糖醛酸含量的测定 | 第34页 |
| ·多糖紫外光谱分析 | 第34页 |
| ·多糖刚果红实验 | 第34-35页 |
| ·多糖单糖组成分析 | 第35页 |
| ·多糖甲基化分析 | 第35-36页 |
| ·巨噬细胞的分离纯化 | 第36页 |
| ·多糖的细胞毒性检测 | 第36页 |
| ·多糖对巨噬细胞NO、TNF-α和IL-1β含量的影响 | 第36-37页 |
| ·多糖对巨噬细胞吞噬作用的影响 | 第37页 |
| ·多糖中LPS污染的检测 | 第37页 |
| ·主成分分析 | 第37-38页 |
| ·多元线性回归分析 | 第38页 |
| ·数据处理 | 第38-39页 |
| 三 结果与讨论 | 第39-74页 |
| ·霍山石斛多糖HPS1的纯化及理化性质分析 | 第39-43页 |
| ·霍山石斛多糖HPS1的纯化 | 第39页 |
| ·七种组分多糖的相对分子量及均一性 | 第39-41页 |
| ·七种组分多糖的糖醛酸含量 | 第41页 |
| ·紫外光谱分析 | 第41-42页 |
| ·刚果红实验结果 | 第42-43页 |
| ·HPS1七种组分多糖的结构特性分析 | 第43-47页 |
| ·单糖组成分析 | 第43-44页 |
| ·甲基化分析 | 第44-47页 |
| ·HPS1七种组分多糖对巨噬细胞免疫活性的影响 | 第47-58页 |
| ·细胞毒性检测结果 | 第47-48页 |
| ·多糖对小鼠腹腔巨噬细胞NO合成的影响 | 第48-51页 |
| ·多糖对小鼠腹腔巨噬细胞分泌TNF-α的影响 | 第51-53页 |
| ·多糖对小鼠腹腔巨噬细胞分泌IL-1β的影响 | 第53-55页 |
| ·多糖对小鼠腹腔巨噬细胞吞噬活性的影响 | 第55-57页 |
| ·多糖中LPS污染的检测结果 | 第57-58页 |
| ·HPS1七种组分多糖对巨噬细胞免疫调节活性的评价 | 第58-62页 |
| ·原始数据的选择及标准化处理 | 第58-59页 |
| ·主成分分析 | 第59-62页 |
| ·HPS1七种组分多糖构效关系分析 | 第62-74页 |
| ·多糖结构特征的主成分分析 | 第62-66页 |
| ·多糖构效关系的多元线性回归分析 | 第66-74页 |
| 四 结论与展望 | 第74-76页 |
| ·结论 | 第74-75页 |
| ·展望 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-87页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第87-89页 |