| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略词表 | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第10-23页 |
| ·研究背景 | 第10-11页 |
| ·植物种质资源保存的重要性 | 第10页 |
| ·香石竹种质资源保存的重要性 | 第10-11页 |
| ·研究进展 | 第11-23页 |
| ·植物种质资源保存研究进展 | 第11-12页 |
| ·超低温保存的研究进展 | 第12-22页 |
| ·超低温保存原理 | 第13-14页 |
| ·影响超低温保存的因素 | 第14-20页 |
| ·冻存后效果的评价 | 第20-22页 |
| ·香石竹超低温保存研究进展 | 第22-23页 |
| ·本研究目的意义 | 第23页 |
| 2 材料和方法 | 第23-27页 |
| ·试验材料 | 第23-24页 |
| ·植物材料 | 第23-24页 |
| ·主要仪器设备 | 第24页 |
| ·主要试剂 | 第24页 |
| ·试验方法 | 第24-27页 |
| ·材料的准备 | 第24页 |
| ·培养基的制备 | 第24页 |
| ·试管苗的获得 | 第24页 |
| ·小滴玻璃化法超低温保存方法 | 第24-26页 |
| ·茎尖的剥离 | 第25页 |
| ·蔗糖预培养 | 第25-26页 |
| ·5%DMSO+5%甘油预培养 | 第26页 |
| ·2M甘油+0.4M蔗糖装载 | 第26页 |
| ·PVS2脱水 | 第26页 |
| ·液氮保存 | 第26页 |
| ·解冻处理和再培养 | 第26页 |
| ·成活率和成苗率的统计 | 第26页 |
| ·小滴玻璃化法实验设计 | 第26-27页 |
| ·超低温保存后形态学的观察 | 第27页 |
| ·数据统计分析 | 第27页 |
| ·超微结构观察的样品处理方法 | 第27页 |
| 3 结果与分析 | 第27-53页 |
| ·材料的选择 | 第27-31页 |
| ·香石竹茎尖小滴玻璃化法超低温保存体系建立 | 第31-41页 |
| ·利用正交设计方法优化超低温保存体系 | 第31-33页 |
| ·单因子实验 | 第33-39页 |
| ·预培养对成活率和成苗率的影响 | 第33-36页 |
| ·2M甘油+0.4M蔗糖装载时间 | 第36-37页 |
| ·PVS2脱水时间 | 第37-38页 |
| ·不同品种的成活率和成苗率 | 第38-39页 |
| ·茎尖恢复培养与植株再生 | 第39-41页 |
| ·超低温保存后再生植株的形态学观察 | 第41-42页 |
| ·香石竹茎尖超低温保存过程中细胞超微结构的变化 | 第42-53页 |
| ·正常生根苗茎尖(对照)的细胞超微结构特征 | 第42-45页 |
| ·蔗糖预培养后细胞的超微结构变化 | 第45页 |
| ·5%DMSO+5%glycerol预培养后细胞的超微结构变化 | 第45-47页 |
| ·装载后细胞的超微结构变化 | 第47-48页 |
| ·PVS2脱水后细胞的超微结构变化 | 第48-50页 |
| ·液氮中保存24h细胞的超微结构变化 | 第50-52页 |
| ·茎尖恢复生长1周后细胞的超微结构变化 | 第52-53页 |
| 4 讨论 | 第53-56页 |
| ·影响超低温保存效果的主要因素 | 第53-55页 |
| ·材料生理状态 | 第53页 |
| ·材料类型 | 第53-54页 |
| ·保存方法 | 第54页 |
| ·预培养 | 第54页 |
| ·品种间差异 | 第54-55页 |
| ·超低温保存过程中细胞的超微结构变化 | 第55-56页 |
| 5 结论与展望 | 第56-57页 |
| ·结论 | 第56页 |
| ·展望 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-66页 |
| 研究生在读期间发表文章情况 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67页 |